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硕士论文--胡颓子叶化学成分及药理活性研究

来源:华拓网
山东省医学科学院硕士学位论文

胡颓子叶化学成分及药理活性研究

姓名:付义成申请学位级别:硕士专业:药物化学指导教师:王晓静

20080501

四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四胡颓子叶化学成分及药理活性研究专业:研究生:导师:药物化学付义成王晓静研究员中文摘要胡颓子叶为胡颓子属(ElaeagnusL.)植物胡颓子(ElaeagnuspungensThunb.)的干燥叶,据资料记载,胡颓子叶味酸、性平,具有敛肺、平喘、止咳的功能。胡颓子为常绿灌木,长江以南各省均有分布。果熟时味甜可食,根、叶、果实均供药用。现代药理研究表明胡颓子属植物具有降血糖、抗脂质过氧化、抗炎镇痛、促进肌肉松弛、抑制溃疡等多种药理活性。目前国内外对该属植物化学成分研究不是很多,对该种植物的研究更少。本论文对胡颓子叶进行了系统的化学成分研究和生物活性研究,为阐明其有效成分提供依据。从胡颓子叶95%乙醇提取物中,经溶剂分步萃取,应用硅胶柱层析、碳十八烷基硅胶柱层析等技术,从胡颓子叶中分离纯化得到18种化学成分,根据其理化性质并运用IR、ESI-MS、1D-NMR,2D—NMR等波谱方法,参考文献报道的数据,鉴定了其中16种化合物的结构,分别为正三十一烷(I),B.谷甾醇(II),羽扇豆醇(III),豆甾一4-烯.3,6-二酮(Ⅳ),水杨酸(V),没食子酸(VI),香草酸(VII),山柰酚(VIII),山柰酚一3·O-B-D一6—0一(对羟基桂皮酰基)-吡喃葡萄糖苷(Ⅸ),甲基肌醇(X),胡萝卜苷ⅨI),槲皮素(XII),3’.甲氧基槲皮素(XIII),葛花苷(xIV),37.O-甲基鞣花酸.4.O-a.L.鼠李糖苷(XV),山柰酚一7一O-13一D一吡喃葡萄糖苷(XVI)。其中,化合物Ⅳ,V,VI,VII,VIII,IX,XI,XII,XIII,XIV,XV,XVI为首次从胡颓子叶中分得,化合物X'VII,XVIII的结构正在鉴定中。从胡颓子叶中提取挥发油进行GC-MS分析,共分离得到46个峰,鉴定出其中国山东省医学科学院研究生毕业论文幽的30种纯学成分,占总挥发油成分的87.15%。对胡颓子叶提取物进行了祛痰作用的生物活性筛选,结果表明其能够增加气管、支气管粘膜的分泌功能,使痰液粘度下降,易于咳躜,从两舆有祛痰作用。对从胡颓子叶得到的几个主要化合物进行体外肿瘤传代细胞株细胞毒作用的试验观察,结果表襄有凡个化合物有一定的细胞毒作用。关键词:胡颓子叶;化学成分;挥发油;生物活性;细胞毒作晨四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四StudiesontheChemicalConstituentsandBioactivitiesofleavesofElaeagnuspungensMajorM.S.CandidateTutorMedicinalChemistryFu,YichengProfessorWang,Xiao—jingEnglishAbstractElaeagnuspungens,whichiswidelydistributedinsouthofYangtzeRiver,isaveryfamousChinesefolkmedicineusedinthetreatmentofrestrainlung,relievingcough,drawingasthma,etc.Theripefruitissweetandedible.Theroot,theleafandthefruitcansupplyformedicinalpurposes.ThemodemparmacologicalstudiesindicatethattheplantsofElaeagnusL.haveeffectsofloweringserumlipid,glucosetheandanti—lipidperoxidation,anti-inflammatoryandanalgesic,aswellaspromotingmuscletorelaxandthesuppressionulcer,etc.ThechemicalconstituentsandtheirbiologicalactivitiesintheleavesofElaeagnuspungenswerestudied.Fromthe95%ethanolofTLCextractofleavesofElaeagnuspungens,byusingandsilicagelcolumnchromatography,compoundswereisolatedoftheirchemicalandphysicalpropertiesasandaspurified.OnthebasisspectradataofwelltheIR,ESI-MS,EI-MS,1D-NMR,2D-NMR,etc,compared埘thdatatheconstituentsweredetermined.Eight-reportedinliteratures,thestructuresofeencompoundswereisolatedfromtheleavesofElaeagnuspungens.SixteenaleofthemweredeterminedwhichHentriantane(I),13-sitosterol(II),Lupeol(III),enedione(IV),salicylicacid(V),gallicacid(VI),vanillicacid(VII),kaempferol(VIII),kaempferol…3O9-0-6-O-p—hydroxycinnamoyl)-glucopyranoside(IX),bomesit-ol(X),daucosterol(XI),quercetin(XII),3"-0-methylquercetinQXIII),kakkalide(XIV),3’-0-methyl-ellagicacid…4Oa—L—rhamnicosideav),kaempferol一7一O邛-D—glucopyranoside(XVI).CompoundsIV,V'VI,VII,VIII,IX,XI,XII,XIII,XIV,XV,XVIareisolatedfromthefirstleavesofElaeagnuspungensforthetime.ThestructuresofcompoundsXVIIandXVIIIarebeingdetermined.-3.函山东省医学科学院研究生毕业论文幽ThecompoundsofvolatileoilfromtheleavesofElaeagnuspungenswereanalyzedbytheGC-MSand46peakswereobtained.30ofthemweredeterminedwhichcountfor87.15%ofthetotalvolatileoilingredients.onTheexpectorantingactionselectiontheextractoftheleavesofElaeagnuspungensindicatedthatitcouldincreasesecretingofthetracheaandbronchus.ThemaincompoundssepratedfromtheleavesofElaeagnuspungenshavethecytotoxicactivitytosomeextentintheparmacologicalexperiment.KEYWORDS:leavesofElaeagnuspungens;chemicalconstituents;volatileoil;bioactivi锣;cytotoxici锣.4-四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四符号说明13C-NMRCarbonicnuclearmagneticresonance1H-NMRHydrogenousnuclearmagnetiCresonanceESI-MSE1ectrosprayionizationmassspectrumIRInfraredabsorptionspectrumTLCThin—layerchromatography111.P.Meltingpoint-5.核磁共振碳谱核磁共振氢谱电喷雾电离质谱红外光谱薄层层析熔点学位论文独创性声明本人声明,所呈交的学位论文系在导师指导下本人完成的研究成果。文中引用他人的成果,均已做出明确标注或得到许可。论文内容未包含法律意义上已属于他人的任何形式的研究成果,也不包含本人己用于其他学位申请的论文或成果。学位论文知识产权权属声明本人在导师指导下所完成的论文及相关的职务作品,知识产权归属山东省医学科学院。山东省医学科学院享有以任何方式发表、复制、公开阅览、借阅以及申请专利等权利。本人离校后发表或使用学位论文或与该论文直接相关的学术论文或成果时,署名单位仍然为山东省医学科学院。论文作者签名:日期:五盒&年I_阜月—华日导师签名:日期:鲤亟:年_支月名一研究生导师和课题指导小组介绍研究生指导老师:王晓静,研究员,硕士生导师,天然药化室主任。主要从事天然药物的研究与开发,为首或为主承担省科委课题3项,省自然基金和国际合作项目2项,省医科院课题8项;为主研制4种新药,3项获卫生部颁发的新药证书,另1项已报国家药品监督管理局待批;获国家发明专利3项。在《中草药》等专业期刊上发表论文20余篇。(Ⅲ)人才建设工程。课题指导小组成员:王元书男,1952年12月生,研究员,山东省医学科学院药物研究所所长,硕士生导师,从事药理学研究。丁杏苞女,1942年5月生,研究员,享受特贴。从事天然药物化学的研究与开发。2001年12月入选山东省医科院首批126高层次杜成林男,1974年4月生,助理研究员,从事天然药物化学的研究与开发。孙敏耀男,1963年6月生,副研究员,从事天然药物化学的研究与开发。函山东省医学科学院研究生毕业论文四嚣鞋舀在创新药物方面,走化学研究的路予是越来越艰难,而从自然界中发掘天然药物却相对容易一些。目前我们使用的很多药物都直接或间接来源于天然产物,天然产物形成了当今食晶、药品、化妆品开发的广泛的物质基础,近年来在抗癌、抗感染、心血管系统和免疫系统药物领域中开发出或正在开发的有重大治疗价值的药晶充分证实了这一点。当今世界不少大型制药企业都将目光集中到天然产物这一领域,即从天然产物中寻找生理活性成分,经广泛的药理筛选和研究开发成新药,可以大大缩短新药开发周期,降低成本,克服了合成上设计的盲目性和毒副作用较大这些缺点。植物药是我国医药学的重要组成部分,在我国数千年的发展过程中,我们的祖先在同疾病的斗争中,积累了宝贵的和极其丰富的用植物药防病治病的经验。我国的药用植物资源是世界上最丰富的国家之一,这些对药物研发相对薄弱的我们来说应该是~笔宝贵的财富。近年来我们国家也在充分利用我们的传统中药这一优势来加快发展天然药物,并取得了很好的成果。胡颓子科植物有两个属,其中胡颓子属在我国有55种,该属植物生物活性比较多,目前,我国有关胡颓子属植物的文献报道还比较少,而胡颓子属植物的药用价值多数仅停留在中医中药的传统经验阶段,其化学成分分析、药理实验等工作较为薄弱。虽然人们对胡颓子属植物的化学成分和药理等方面的研究取得了一定的进展,但是对该属植物有效成分和药理活性的化学成分和生物活性的具体作用机制还不是很清楚,尤其是化学与药理方面有机结合起来的工作还有待于进一步深入研究。因此,如何充分利髑我国丰富的胡颓子属植物资源,特别是将其开发成有临床应用价值的药物,还有很多工作需要做。本研究拟对胡颓子叶进行一系列下面的研究:胡颓子(ElaeagnuspungensThunb.)叶的提取与分离:采用各种色谱分离技术对胡颓子叶乙醇提取物进行系统分离,得到其成分。胡颓子(E]aeagnuspungensThunb.)叶有效成分的结构鉴定:对分离得到的化合物,采用ESI-MS、RP一18、1D-NMR、2D-NMR等波谱方法对化合物的结构进行鉴定。初步的药理活性筛选,弄清其生物活性的物质基础。国胡颓子叶化学成分及药理活性研究∞第一章胡颓子属植物研究概况胡颓子属(E]aeagnusL.)属于胡颓子科(£laeagnaeeae),全世界约有80余种,主要分布于亚洲东南地区和亚洲其它地区,欧洲和北美洲也有分布。胡颓子属植物在我囡有5S种,是胡颓子科中种类最多,分布最广的属,其55种植物遍布全图各地,尤以长江流域及以南地区更为普遍n1。与同科沙棘属植物相比,胡颓子属植物资源更加丰富,其中有许多黑种具有药食两用价值、观赏价值和环保价值。隧前针对胡颓子属植物资源,国内主要围绕其分类学、生药学和果树资源等方面进行研究,国外则侧重于与其共生的根瘤菌和分子生物学的研究瞄一。。近年来对胡颓子属植物的次生代谢产物的研究在国外有一定进展疆3,丽冒内却少有人问津,尤其是对胡颓予属植物资源,除了少量关于挥发油及微量元素成分的分析研究之外强≯。,化学成分的研究报道是少之更少。在我国民间,入们常用胡颓子属植物作为药物治疗各种疾病,如肝炎、风湿性关节炎、肠炎、脑血栓、毒蛇咬伤等瘸症。为进一步推动我国胡颓子属植物资源的更深层次利用和开发,本文对我国所拥有的胡颓子属植物在药用价值、化学成分和药理活性研究方面作一综述,为今后能更好地综合利用胡颓子属植物资源提供参考。1.1胡颓子属植物的药用价值胡颓子属植物中有许多种为珍贵的药食两用植物,其果实常被加工成食品。常用的包括牛奶子(EumbellateThunb)、胡颓子(EpungensThunb.)、角花胡Warb.ex颓子(成onyanthesBench.)、披针叶胡颓子(置lanceolata沙枣(EangustifoliaDiels),L.)、宜昌胡颓予(EhenryiWarb.exDies)、星龟羊奶flora)、长子但stellilaRehd.)、木半夏(E叶胡颓子(EbookiimultlfloraThunb.var.multlDiels)和蔓胡颓子(E班abraThunb)等。目前,该属植物中有些种类已被生产成药品,如杭州中药厂生产的治喘片主要以胡颓子叶为原料,其药用成分主要有:单宁、生物碱、黄酮菅、有机酸、香豆精、三萜及甾醇类化合物等。以胡颓子叶提取物制成的注射液用喷雾法直接作用于慢性喘息性气管炎患者的支气管粘膜,平喘有效率为92.1%;穴注法有效率为81.8%。还有报道国外从我国的胡颓子属植物中成功地提取了对平滑肌有调节作用的5一羟色胺,并将其用于治疗风湿性疾病锄。四山东省医学科学院研究生毕业论文四蔓胡颓子:根可清热、利湿、消肿止血,主要治传染性肝炎、小儿疮积、痢疾、风湿痹痛、咯血、便血、崩漏、跌打损伤:叶可平喘止咳,治支气管炎、咳嗽、哮喘及肝炎:果主治肠炎、痢疾、食欲不振。牛奶子:果能清热利湿、止血、治咳嗽、泄泻、痢疾、‘淋病:叶能治疗疮。宜昌胡颓子:果实、叶、根均可入药,可治痢疾、肺虚气短、吐血、疥疮、脑血栓。木半夏:果主治哮喘、痢疾、跌打损伤、痔疮等:根皮煎汁可治疥疮,并有活血、行气补虚损之效:叶可治肝炎及咳嗽。胡颓子:果实治痢疾、消渴、喘咳、病气、血崩、骨髓炎等:叶可治肺虚、气喘、咯血、痈肿、外伤出血:根有止咳、止血、利湿、消积滞作用。长叶胡颓子:根、枝、叶均可入药,治牙疼、哮喘、止咳化痰、顺气、治痔疮。角花胡颓子:果可治肠炎、腹泻:全株治痢疾、跌打、癖积:叶可治肺病、支气管哮喘、感冒咳嗽等。星毛羊奶子:根、叶、果治跌打损伤、痢疾,有散癖清热之效。1.2胡颓子属植物的化学成分有关胡颓子属植物的化学成分己有一些报道,胡颓子属植物的化学成分主要含有生物碱、挥发油、脂肪酸、黄酮、萜类、甾体、寡肽、氨基酸和蹂质等口3。另外胡颓子果实中还含有大量的微量元素。1.2.1生物碱胡颓子属植物中生物碱的类型主要为B一卡琳类和羟吲哚类生物碱。早期的定性检测和初步分析显示在胡颓子属植物沙枣的根皮和地上部分均含有生物碱类成分。迄今已从沙枣根皮中分离出8个生物碱成分,包括:哈尔曼(harman)、二氢哈尔曼(dihydroharman)、2一甲基一1,2,3,4一四氢一B一卡啉(2一methyl一1,2,3,4一tetrahydrocar—B—carboline)、胡颓子碱(elaeagnine)、四氢哈尔醇(tetrahydroharm01)、Ⅳ一甲基四氢哈尔醇(Ⅳ一methyltet—rahydroharm-oi)、哈尔明(harmine)、哈尔醇(harm01)。此外在牛奶子叶和茎皮部位也发现了5一轻色胺口,"。1968年,Slywka等从银果胡颓子(E.commutatebernh)的根皮中还分离得到有旋光性的半萜螺环羟吲哚类生物碱(+)一elacomine,该化合物的结构及绝对构型是在1996年通过化学合成得以证明随1。值得一提的是对银果四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四f胡颓子的根皮进行重复分离研究时发现生物碱Elacomine和Isoelac—omine都是以消旋体形式存在于植物体中阳1。1970年,Slywka等人又从银果胡颓子的根皮中得到另一个新卡琳类生物碱卜异丁基一1,2,3,4一四氢一矿卡琳,但未发现该化合物的盐酸盐有旋光活性,其结构与生物碱Elacomine和lsoelac—omine似有生源关联盯3。1.2.2挥发油挥发油是存在于胡颓子属植物中的一类重要化学成分。胡颓子属植物沙枣的花不仅可供药用,也是天然香料,可提取高级香精油。李兆琳陆1等从其花中提得的挥发油,含油量高达0.1%,运用GC-MS研究了挥发油的化学成分,色谱分离出85个组分,质谱确定了其中47个组分的化学结构,其主要成分为反式一肉桂酸乙酯。而最近刘哗伟陋1等也运用GC-MS研究了从其花中提得挥发油化学成分,鉴定了17种化合物,而且同样证实了反式一肉桂酸乙酯为其主要成分。另外中药辞海中记载胡颓子属植物的叶子中也含有大量的挥发油。1.2.3脂肪酸另一类广泛存在于胡颓子属植物中的化学成分是脂肪酸,主要存在于果实和种子中。江发寿阳3等从沙枣种子中分离出4种不饱和脂肪酸,证实沙枣油主要含有不饱和脂肪酸,使其在医疗上有重要的药用价值,而且也是制备营养保健油的优质原料。1.2.4萜类和甾体类萜类化合物广泛存在于胡颓子属植物的根、叶以及种子中。从胡颓子属植物中分离出的三萜成分主要是齐墩果酸、乌苏酸以及羽扇豆醇等。甾体类成分主要是B一谷甾醇及其葡萄糖苷盯’1们。1.2.5黄酮1973年,波兰学者对沙枣树叶中的黄酮成分进行了研究,从中分离得到4个黄酮化合物,并鉴定了其中的3种口3。Tagaharan们等从胡颓子中分离得到3,7一二甲基山奈酚。赵鑫从胡颓子叶分离得到包括望春花黄酮醇苷A(biondnoids醇苷类化合物山奈酚一3—0一B-D-(4"-0-4一香豆酰基)葡萄糖苷在内的6个黄酮代葡萄糖的黄酮醇chrysoeriol苷类化合物。胡颓子属植物所含的黄酮苷类化合A)在内的6个黄酮类化合物。Cao…3等从长叶胡颓子中同样分离得到包括新黄酮类化合物。此后,Caon23等又从披针叶胡颓子的叶中发现了两个含有香豆酰基取豳山东省医学科学院研究生毕业论文四物的特点是在其糖部分常有香受酰基、阿魏酰基或芥子酰基的存在,丽其瞢元则多以山奈酚(kaempfer01)、槲皮素(quercetin)等为主。赵鑫从胡颓子叶中分出三个寡肽类化合物,丰富了该属植物的化合物结构种类。1.2。7氨基酸和微量元素汪维云、高学玲n33利用氨基酸自动分析仪法测得胡颓子、木半夏及牛奶子的果实中含有多种氨基酸。尤其入体必需的几种氨基酸(苏氨酸、蛋氨酸、缬氨酸、异亮氨酸、亮氦酸、苯丙氨酸、组氨酸等)含量比较高。他们又用原子吸收法测出果实中含有Zn、Fe、戮n、Cu和K等微量元素。1.2.8鞣质Iton铂等从牛奶子中分得一系列e一糖菅鞣花鞣质化合物胡颓子亭A_G(ElaeagnatinsA—G).四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四1.2.9其它1974年,苏联科学家从沙枣树叶中提取出咖啡酸、绿原酸和新绿原酸,还从沙枣树皮中分离得到儿茶酸(十)、表儿茶酸(一)及另两种儿茶酸类化合物口1。Rawatn朝等牛奶子地上部位分离得到一个新蒽醌苷类化合物1,6一二羟基-2-基一8—0一B—D一葡萄糖基(卜6)一旷L~木糖苷葸醌。1.3胡颓子属植物的药理活性1.3.1降血糖作用李玉山n刚等以四氧嘧啶致糖尿病小鼠,应用长叶胡颓子果实水煎剂进行试验观察,检测空腹血搪(FBG)、血浆胰岛素(NS)和C肤(C-P),结果发现可以使可以使糖尿病小鼠空腹血糖(FBG)降低,虽然对血浆胰岛素(NS)和C肤(C-P)没有明显影响,但胰岛素敏感指数(ISI)却明显高于实验对照组(P<O.05),研究结果还显示,胡颓子果实水煎剂抑制糖尿病小鼠血糖的升高与水煎剂浓度计量存在一定的依从关系,但对一定的血浆胰岛素(NS)和C肽(C-P)的没有明显的影响,这表明胡颓子果实降低血糖的作用并非通过刺激血浆胰岛素的增加完成。1.3.2抗脂质过氧化作用长叶胡颓子果实水煎剂能明显降低高胆固醇高脂饲料诱发高脂模型大鼠血浆中血清胆固醇(TC)、甘油三醋(TG)和低密度脂蛋白(LDL-C)的水平(P(O.05),调节体内脂质代谢,改善血流状况,有预防动脉粥样硬化和心血管系统疾病的作用。此外,还能够清除体内活性氧,减少膜脂过氧化,提高体内超氧化物歧化酶(SOD)和谷光甘肤过氧化物酶(GSH-PX)的活力以及减少丙二醛(MDA)和活性氧(R0S)的产生(P(O.05).SOD和GSH-PX作为体内关键性的抗氧化酶,可以防止脂质过氧化及其中间代谢产物对机体的损害n引。1.3.3抗炎镇痛作用富硒长叶胡颓子根皮抗炎作用明显,其水煎液和乙醇提液都能明显抑N--甲苯引起的小鼠的耳廓肿胀,且水煎剂的作用高于乙醇提取液。其乙醇提取液能明显抑制大鼠角叉菜引起的足肿胀:水煎剂能明显提高小鼠热板所致痛闭值,对醋酸所致小鼠扭体反应也有明显的对抗作用n利。而从沙枣果实和种子的水煎剂和乙醇提物也能明显提高小鼠热板所致的痛闭值,证明沙枣果实和种子也有明显的抗炎镇痛作用n8一引。‘1.3.4促进肌肉松弛作用四山东省医学科学院研究生毕业论文四Hosseinzadeh等㈨的研究表明,用沙枣种子的水煎剂和乙醇提取物为小鼠皮下注射给药,可以明显促进小鼠的肌肉松弛,初步的植物化学试验显示提取物中含有黄酮,这也可能是其促进肌肉松弛作用的基础。1.3.5抑制溃疡作用沙枣果实的甲醇提取物在对乙醇诱发溃疡大鼠的试验中显示有明显的抑制溃疡作用,在剂量为3150mg/kg时,甲醇提取物抑制率可以达到99.4%口¨。1.3.6免疫及抗癌作用胡颓子熊果酸能促进脾细胞增殖反应,对脾细胞IL一2、IFN—Y的产生有显著促进作用。伍杨、邓明会瞳23等用小鼠分组进行分组对照试验。他们先常规制备小鼠脾细胞混悬液,然后分组加入不同浓度的熊果酸纯品进行离心,最后取上清液进行统计分析得出熊果酸能促进小鼠脾细胞产生增殖影响(P<0.01),小鼠脾细胞培养上清液中ConA诱生IL一2、IFN—Y(P<0.05)。这也可能是其抗肿瘤作用机制之一。1.3.7对结肠炎的作用长叶胡颓子多糖对结肠炎损伤有保护作用。李玉山乜33从长叶胡颓子中提取出多糖果,然后建立大鼠结肠炎模型,灌胃用药2周后,发现大鼠结肠粘膜损伤指数及结肠髓过氧化物酶活性降低,丙二醛的含量减少,超氧化物歧化酶的活性提高,使显著升高的细胞肿瘤因子、白细胞介素一8水平下降、细胞介素一lO水平升高,并与用药剂量呈量效关系。四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四第二章胡颓子叶化学成分研究2.1概述从胡颓子(ElaeagnuspungensThunb.)干燥叶的95%7,醇提取物中,经溶剂分步萃取,反复硅胶柱层析,碳十八烷基键合硅胶柱层析,大孔吸附树脂AB.8柱层析,重结晶等方法得到了18个化合物,通过理化常数测定和光谱数据分析等手段鉴定了其中16个化合物的结构,分别为正三十一烷(I),13一谷甾醇(II),羽扇豆醇(III),豆甾.4.烯.3,6.二酮(Ⅳ),水杨酸(V),没食子酸(VI),香草酸ⅣII),山柰酚(VIII),山柰酚.3.O-13…D36o-(对羟基桂皮酰基)-吡喃葡萄糖苷(I)(),甲基肌醇(X),胡萝卜苷(XI),槲皮素(XII),37.甲氧基槲皮素(XIII),葛花苷(XIV),7.D-甲基鞣花酸一4一O-a.L.鼠李糖苷(xv),山柰酚一7一O-13一D一吡喃葡萄糖苷(XVI)。其中,化合物Ⅳ,V,VI,VII,VIII,IX,XI,XII,XIII,XIV,XV,XVI为首次从胡颓子叶中分得,化合物XVII,XVIII的结构正在鉴定中。表2.1列出了从胡颓子叶中分离得到的化学成分及主要结构鉴定方法。仉山1e2.1StructuresandIdentificationMethods四山东省医学科学院研究生毕业论文四No.NamesofCompoundsStructuresofCompoundsIdentificationMethodsIV豆甾一4一烯一3,铲二酮m.P.ESI—MS1H.NMR13C-NMR(enedione)V水杨酸ESI—MS(salicylicacid)C∞Hm.P.IR1H-NMR13C-NMR没食子酸m.P。ESI—MSVI(gallicacid)C00H1H-NMR13C-NMR香革酸m.P。ESI—MSVII(vanillicacid)1H,NMR13C.NMRm.P.IRESI.MSVIII山柰酚(kaempfer01)1H.NMR13C.NMR…D由奈酚.3.O-136O。(对羟基桂皮酰m.P.IRESI.MSIX基卜毗喃葡萄糖萤1H-NMR13C-NMR[kaempferol-3一O一§-D-6-0-◇-hydroxycinnamoyl)-glucopyranoside】·14—四I胡颓子叶化学成分及药理活性研究四INo.NamesofCompoundsStructuresofCompoundsIdentificationMethodsX甲基肌醇(bomesit01)H。瞽删。搽ES№I-M积Sm.P.ESI—MSTLCm.P。IRXI胡萝卜苷(daucoster01)ES王.MSXI王槲皮素(quercetin)’H.NMR13C-NMRXIII3’一甲氧基槲皮素(3"-O-methylquerce.tin)m.P.ESI—MS1H-NMR13C-NMRXlV葛花苷(kakkalide)m.P.IRESI.MS1H-NMR’3C-NMR-15.四山东省医学科学院研究生毕业论文四2.2胡颓予叶化学成分的提取和分离2.2.1实验仪器与药材仪器:X一6、WL型显微熔点测定仪(温度计未校正)NICOLETNEXUS670BruckerAvANCEFT-IR型红外分光光度计600、INOVA-500型核磁共振仪VGZAB-ZF型质谱仪试剂:柱层析硅胶(青岛海洋化工厂)十八烷基键合多孔硅胶薄层层析硅胶(青岛海洋化工厂)其他试剂均为分析纯药材:胡颓子叶于2006年购霸安徽毫州敬德药业,经山东大学药学院生物教研室陈沪宁副教授鉴定为胡颓子属植物胡颓子(ElaeagnuspungensThunb.)的于燥叶。臼胡颓予叫化学成分及药理活性研究臼目21目颓rH2.2.2化学成分的提取和分离2.2.2.1提取干燥的胡颓子叶15kg,95%乙醇加热回流提取3次,每次2小时。合并滤液减压回收乙醇,得浸膏。将浸膏制成水混悬液,依次以石油醚、氯仿、乙酸乙酯正丁醇萃取,得到四个不同极性部位萃取物,分别为29@,1239,1239,3509,提取流程见图22。圈22.22胡颓子叶提取及部位分离流程图2.2分离2.2.2.2.1石油醚部位的分离纯化硅胶共130091,石油醚一厶酸厶酯(100:0~99:I~98:2—97:3—95:5曲卅1墩打油醚部位2959,硅胶柱层析分离(10cmxlOOcm玻璃层析柱,200~300日8:27:3~5:5--0:100)梯度洗脱,缚1000mL为一流份,共收集110个流份(A1~A110)。TLC检测,合并相同流份,采用结晶、晕结品或反复硅胶层析进行纯化,得到凹四山东省医学科学院研究生毕业论文四个化合物(I-IV),分离流程可见下图2-3。石油醚萃取浸膏2959A3—A18h41.,A55硅胶柱层析重结晶石:乙梯度洗脱A57~A62A63-A70lI+III重结晶I怿瓢图2.3石油醚部位分离流程图A3 ̄A18(石油醚:乙酸乙酯100:O)合并重结晶得化合物IA4I-A55(石油醚:乙酸乙酯85:15)合并,硅胶柱层析分离(3cmX50am玻璃层析柱,200~300目硅胶共609),石油醚一乙酸乙酯(100:0-99:1~98:2-97:3~95:5-9:1-8:2-7:3)梯度洗脱,每60mL为一流份,共收集35个流份(A41/I~A41/35)。TLC检测,合并相同流份,石油醚一乙酸乙酯重结晶,得化合物II。从流份A57~A62(石油醚:乙酸乙酯85:15)合并,硅胶柱层析分离(2cm×50cm玻璃层析柱,200~300目硅胶共309),石油醚一乙酸乙酯(i00:O-99:1~98:2-97:3~95:5-9:1-8:2-7:3)梯度洗脱,每60mL为一流份,共收集18个流份(A57/I~A57/18)。TLC检测,合并相同流份,石油醚一乙酸乙酯重结晶,从流份A57/10~A57/15(石油醚:乙酸乙酯85:15)得化合物Ill。A63-A70(石油醚:乙酸乙酯8:2)合并,硅胶柱层析分离(2cmX50cm玻璃层析柱,200~300目硅胶共259),石油醚一乙酸乙酯(98:2-97:3-95:5-9:1-8:2~7:3)梯度洗脱,每60mL为一流份,共收集15个流份(A63/1 ̄A63/15)。TLC检测,合并相同流份,石油醚一乙酸乙酯重结晶,得化合物IV。2.2.2.2.2氯仿部位的分离纯化取氯仿部位1239,硅胶柱层析分离(10cmX80cm玻璃层析柱,200~300目硅胶共6009),石油醚一丙酮(100:0-99:1~98:2-97:3-95:5-9:1-8:2-7:3-5:5~0:100)梯度洗脱,每1000mL为一流份,共收集80个流份(B1~B80)。TLC检测,合并相同流份。该部位的分离比较困难,从一开始洗脱到洗脱结束一直有很多叶绿素存在,该部位在上层析柱前用液相检测过,有2至3个峰较明显,但由·18-四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四于大量色素的因素,造成该部位的纯化非常困难,所以到目前为止还没有从该部位拿到化合物。2.2.2.2.3乙酸乙酯部位的分离纯化取乙酸乙酯部位1239,硅胶柱层析分离(10amXlOOcm玻璃层析柱,200~300目硅胶共13009),氯仿一甲醇(100:0~99:1-98:2 ̄97:3-95:5~9:1~8:2~7:3~5:5~0:100)梯度洗脱,每1000mL为一流份,共收集148个流份(C1--C148)。TLC检测,合并相同流份,采用结晶、重结晶或反复硅胶层析进行纯化,得到八个化合物(v ̄XII),分离流程见图2.4。乙酸乙酯萃取浸膏1239上重结晶上霾差主上蠢结上萋篓;上蓁篓;土萋篓;上重结晶上萋篓.19.四山东省医学科学院研究生毕业论文四200~300目硅胶共259),氯仿一甲醇(100:O~98:2~97:3-95:5 ̄9:1~8:2~7:3)梯度洗脱,每50raL为一流份,共收集29个流份(C47/1 ̄C47/29)。TLC检测,合并相同流份,氯仿:甲醇重结晶,析出黄色粉末,得化合物XII。C60~C95(氯仿:甲醇8:2)合并,硅胶柱层析分离(3cruX50cm玻璃层析柱,200~300目硅胶共509),氯仿一甲醇(100:0~98:2~95:5~9:1~8:2~7:3~6:4)梯度洗脱,每50mL为一流份,共收集31个流份(C60/10 ̄C60/31)。TLC检测,合并相同流份,氯仿:甲醇重结晶,析出淡黄色结晶得化合物IX。C97--C105(氯仿:甲醇7:3)TLC检测,氯仿:甲醇重结晶,得化合物XI。C108--C128(氯仿:甲醇7:3)合并,硅胶柱层析分离(2cmX50am玻璃层析柱,200~300目硅胶共289),氯仿一甲醇(100:0~98:2~95:5~9:1~8:2~7:3~6:4~5:5)梯度洗脱,每50mL为一流份,共收集18个流份(C108/1 ̄c108/18)。TLC检测,合并相同流份,氯仿:甲醇重结晶,析出无色块状结晶得化合物X。2.2.2.2.4正丁醇部位的分离纯化取大孔吸附树脂(AB-8)20009乙醇湿法装柱,95%乙醇流动清洗,检查流出的乙醇,直至流出的乙醇液与水混合不呈现白色乳浊物即可。然后以大量蒸馏水洗去乙醇。取正丁醇萃取浸膏3509,用水溶解过滤,水溶性部分进行大孔树脂柱层析分离,乙醇(0%~30%,--60%--90%)梯度洗脱,每一梯度洗脱流份收集起来进行硅胶柱层析,分离流程见图2.5。正丁醇萃取浸膏3509水30%乙醇目硅胶4509氯度洗脱60%乙醇90%乙醇g.土辈燃氯P黼层上辈嚣氯上军躲氦四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四30%乙醇流份浸膏,硅胶柱层析分离(10cmXlOOam玻璃层析柱,200~300目硅胶4509),氯仿一甲醇(97:3~95:5-9:1-8:2-7:3-5:5-0:100)梯度洗脱,每500mL为一流份,共收集53个流份(D1~D53)。TLC检测,合并相同流份,氯仿:甲醇重结晶,得到二个化合物(xIv,XVI)。D23~D32(氯仿:甲醇8:2)合并,硅胶柱层析分离(2cmX50am玻璃层析柱,200~300目硅胶共209),氯仿一甲醇(97:3~95:5-9:1-8:2-7:3-5:5)梯度洗脱,每lOOmL为一流份,共收集25个流份(D23/1~D23/25)。聚酰胺薄膜与TLC检测,合并相同流份,氯仿一甲醇重结晶,得化合物XIV。D35~D42(氯仿:甲醇7:3)合并,硅胶柱层析分离(2cmX50am玻璃层析柱,200~300目硅胶共279),氯仿一甲醇(97:3~95:5~9:1~8:2~7:3-5:5-0:100)梯度洗脱,每lOOmL为一流份,共收集28个流份(035/1~D35/28)。合并相同流份,聚酰胺薄膜检测为一主斑点。C18烷基硅胶柱层析(1009,2.5cmX50cm)纯化,得化合物XVI。60%乙醇流份浸膏,硅胶柱层析分离(10cm×lOOcm玻璃层析柱,200-300目硅胶6009),氯仿一甲醇(98:2~97:3~95:5-9:1-8:2-7:3—5:5-0:100)梯度洗脱,每600mL为一流份,共收集55个流份(El~E55)。TLC检测,合并相同流份,得到两个化合物(XIII,XV)。E7~E12(氯仿:甲醇8:2)合并,硅胶柱层析分离(3cmX50cm玻璃层析柱,200~300目硅胶共509),氯仿一甲醇(97:3~95:5~9:1-8:2-7:3-5:5)梯度洗脱,每lOOmL为一流份,共收集33个流份(E7/1~E7/33)。聚酰胺薄膜与TLC检测,合并相同流份,氯仿一甲醇重结晶,得化合物XIII。E35~E43(氯仿:甲醇8:2)合并,硅胶柱层析分离(2cm×50cm玻璃层析柱,200~300目硅胶共509),氯仿一甲醇(97:3~95:5-9:1-8:2-7:3-5:5)梯度洗脱,每lOOm[.为一流份,共收集25个流份(E35/1~E35/25)。聚酰胺薄膜检测,合并相同流份,得化合物XV。2.3胡颓子叶化学成分的结构鉴定2.3.1化合物的结构鉴定化合物I:无色鳞片状结晶(石油醚),m.P.62-64"C。易溶解于石油醚、氯仿。IR(KBr)vvam-1:‘V2956及v2917为甲基和亚甲基的C—H伸缩振动吸收峰,1462为甲基、亚甲基的C-H弯曲振动吸收峰,v718中强吸收显示烃基链长>4,四山东省医学科学院研究生毕业论文四初步判断可能为直链饱和烃。EI—MS(m/z):436(矿)为分子离子峰。57,71,85,99,I13,125等一系列C。H。,。峰证明化合物I为长链脂肪烃,分子式为C。,H64。其光谱数据与文献阳3报道基本一致,确定化合物I为正三十一烷(Hentriantane)。化合物II:无色针状结晶(石油醚),m.P.137~139℃。分子量414,分子式C29H500。Liebermann-Burchard试验呈阳性反应。IR(KBr)vcm-1:v3430为羟基伸缩振动吸收峰,V2936,2852为甲基和亚甲基的C—H伸缩振动吸收峰,V1382,1368为异丙基C-H弯曲振动吸收峰,v959为反式双键C-H面外弯曲振动吸收峰,v1061为C-O伸缩振动吸收峰。与已知的B一谷甾醇共薄层,Rf值和斑点颜色均一致,且混合熔点不下降,故化合物II鉴定为B一谷甾醇(B-Sitoster01)。化合物III:无色针状结晶,m.P.214~215。C。ESI—MS:正离子检测:427[M+H]+,故其分子量为426。13C-NMR中显示有30个碳信号,故分子式为C∞H∞0。不饱和度为6,1H—NMR(600MHz,CDCI。)中6:0.78,0.81,0.85,0.96,0.98,1.05(各3H,s)六组氢信号表明此化合物中含有6个角甲基。1H—NMR中在6:4.58(1H,m),4.70(1H,d)两组氢信号和1℃一NMR(150姗z,CDCl。)中6:109.0,150.6的信号表明此化合物中含有双键。且在1H—NMR中6:1.70(3H,S),2.39(1H,dt)有两组氢信号表明此化合物为羽扇豆烷型三萜。1H—NMR中在8:3.20(1H,dd)和13C-NMR中6:77.9的信号表明此化合物中含有羟基。对照文献1H-NMR和13C-NMR数据乜4’2副,确定此化合物为羽扇豆醇(Lupe01)。化合物Ⅳ:无色片状结晶(石油醚),Liebermann—Burchard试验呈阳性反应。m.P.161"162℃:ESI-MS:正离子检测:427[M+HI+:负离子检测:425[M—H]一,分子量为426。13C—NMR谱中显示有29个碳信号,再根据1H_NMR可以推出分子式为C:。H。。02:1H—NMR(600Hz,CDCl。)中O.72(3H,S),0.93(3H,d,J=6.5Hz),O.84(3H,d,J=7.1Hz),0.81(3H,d,J=7.0Hz),O.84(3H,t,Y=7.1Hz)为5个甲基信号;6.17(S,H-4)为一双键信号。13C-NMR(150Hz,CDCI。)中6199.55和6202.42两个信号,表明分子中含两个羰基,另外有6125.44和6161.07可以进一步说明分子中有个双键,综合所有数据对照文献啪1确定该化合物为豆甾-4-烯一3,6一二酮(enedione)。化合物V:无色针状结晶(石油醚一丙酮),m.P.136"--138℃,ESI—MS:正离子检测:149[M+H]+it171[M+Na]+负离子检测:147[i—HI一。分子量为148,分子式四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四IC:H603。溴酚蓝反应阳性,表明有羧基存在。IR(KBr)Vcm-1:V3238是羟基(0H)的伸缩振动吸收峰,V3238---2858宽峰,为羧基氢的伸缩振动吸收峰,V1655是羰基(C=O)伸缩振动吸收峰,v1612,1483,1465是苯环的骨架伸缩振动吸收峰,v758,697,659为苯环C-H面外弯曲振动吸收峰。1H—NMR(600MHz,CDCl。)6ppm:7.03(1H,d,J=8.4Hz),67.55(1H,td,,=8.4Hz和J=1.8Hz),66.95(1H,t,6户8.4Hz),67.95(1H,dd,,=8.4Hz和,=1.8Hz)为苯环的氢,说明苯环为邻双取代,610.35(1H)为羟基氢信号。结合分子式得知化合物为水杨酸。光谱数据与文献口力报道的水杨酸数据基本一致,确定化合物V为水杨酸(Salicylicacid)。化合物VI:棕色针晶(甲醇),m.P.236~238℃;ESI—MS正离子检N-193[M+Na]+,负离子检测:169[M—H]一分子量170;FeCl。显色反应呈阳性,说明该化合物为一酚性化合物。结合1H—NMR和13C—NMR推出分子式为cTn。o;。1H—NMR中8.90(1H,brS),9.21(2H,brS)为羟基信号,6.93(2H,s),说明有两个处在对称位置的氢,12.20(1H,brS)为一羧基信号,这也可由13C—NMR中含有6167.7信号进一步证实,该信号为羧基中羰基信号;6145.3,6137.9为连有羟基的碳信号,综合以上信息,与文献㈨对照确定该化合物为没食子酸(gallicacid)。化合物VII:无色针晶(甲醇),m.P.203-一205。C:ESI—MS正离子检测:169[M+HI+,负离子检测:167[M—H]一,分子量为168。结合1H—NMR和13C—NMR推出分子式为CsH。04’,1H-NMR(DMSo-盔,600MHz)中612.49(1H,S),为一羧基氢信号,另有67.42(1H,dd,户8.4,2.0Hz),66.81(1H,dd,J=8.4,2.0Hz),表明分子中有两个苯环上的邻位氢,63.79(3H,S)为一甲氧基信号;13C—NMR中6167.1为羰基碳信号,6150.9,6147.1为连氧的苯环上的碳信号,其中6147.1是连甲氧基的碳信号,综合以上信息,与文献啪3对照鉴定该化合物为香草酸(vanillieacid)。化合物VIII:黄色粉末(丙酮),m.P.276~278"C,ESI—MS-正离子检测:287[M+H]+,309[M+Na]+,负离子检测:285[M-H]一。分子量为286,分子式C,5H。。06。HCl-Mg粉反应阳性,Molish反应阴性,I%A1C1。乙醇试液显黄色荧光,提示该化合物为黄酮苷元。IR(KBr)vcm-1:v331l是羟基(OH)的伸缩振动吸收峰,v1660是羰基(C=O)伸缩振动吸收峰,V1613,1508是苯环的骨架伸缩振动吸收峰。1H一四山东省医学科学院研究生毕业论文四NMR(DMSo-反,600MHz)中8.04(2H,d,J=8.6Hz),6.93(2H,d,J=8.6Hz)表明B环为对位取代,612.48(1H,S)为5位羟基信号,8.04(2H,d,,=8.6Hz),6.93(2H,d,J=8.6Hz)显示A环为5,7为取代。综合以上信息,与文献口0’311对照确定化合物VIII为山奈酚(kaemfer01)。化合物Ⅸ:黄色粉末,m.P.234""236℃,与盐酸一镁粉反应显红色。ESI—MS正离子检测:617[M+Na]+,负离子检测:593[M—H]一,分子量594,再根据13C-NMR中显示的碳的数目及1H-NMR显示氢的数目推出化合物分子式为C∞H:。0,。。IR中3700"---"3000,1685,1608,1503,1460说明该化合物为黄酮,加之IR中的1068强吸收峰可以进一步表明该化合物为黄酮苷。1H—NMR中的66.4(1H,d,J=1.9Hz)和66.16(1H,d,J=1.96Hz)信号说明A环5、7位被取代,而8.0l(2H,d,J=8.4Hz)和,6.86(2H,d,J=8.9Hz)说明B环上有两组邻位质子,故C-4’被取代,1H—NMR还给出糖端基质子信号65.46(1H,d,J=7.5Hz),这些数据与黄芪苷的信号极为相似,此外还有一组与对羟基桂皮酰基相对应的共振信号,说明该化合物可能为黄芪苷与对羟基桂皮酰基组成的化合物。分析该化合物的13C-NMR化学位移值,进一步表明化合物是由黄芪苷与对羟基桂皮酸组成的。为了确定对羟基桂皮酰基的连接位置,将此化合物在碱性条件下水解,所得水解产物的分子离子峰为m/z447[M—H]一,其数据与黄芪苷(山柰酚一3一D-B—D一葡萄糖)相吻合,说明对羟基桂皮酰基与糖相连接。将该化合物按常法进一步酸水解,经TLC检查出山柰酚和葡萄糖。比较该化合物与山柰酚一3一O-B—D一葡萄糖13C-NMR数据发现,二者苷元的13C—NMR信号完全一致,不同之处仅在于组成该化合物的葡萄糖C-6的13C-NMR信号由661.0向低场移至662.8,C-5的13C-NMR信号由677.5向高场位移至674.1,糖的其余各碳的”C-NMR信号基本未发生变化,说明该化合物分子中的对羟基桂皮酰基与葡萄糖的C-6位成酯苷。综上,对照文献∞21推定该化合物的结构为山柰酚一3一沪B—D-6一俨(对羟基桂皮酰基)一吡喃葡萄糖苷[kaempferol一3一D—B—D一6-0一(p—hydroxycinnamoyl)一91ucopyranoside]。化合物X:无色块状结晶,m.P.203---205。C。ESI-MS正离子检测:195[M+HI+,负离子检测:193[M—H]一,分子量194。结合1H—NMR和13C—NMR推出其分子式为C,H。。06,1H—NMR中有63.3(s.3H),显示有甲氧基氢信号;13C—NMR中656.9为甲氧基的碳信号,而其它碳信号的化学位移值均在67~8l之间,表明这些信号均四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四与氧相连,而碳的化学位移值没有大于90的,可以说明该化合物不是糖,而是一环醇类化合物,由于没有进一步对该化合物进行立体结构鉴定,所以只给出了平面构型,参考相关文献口31鉴定该化合物为甲基肌醇(bomesit01)。化合物XI:白色粉末(氯仿一甲醇),mp300"--302oC,Liebermann一8urchard反应呈阳性。与胡萝卜苷对照品薄层色谱Rf值及显色行为一致,且混合熔点不下降。化合物X鉴定为胡萝卜苷(daucoster01)。化合物XII:黄色粉末(丙酮),m.P.310~312。C,ESI—MS:正离子检测:303[M+H]+,325[M+Na]+,负离子检测:301[M—H]一。分子量为302,分子式C,5H,。O,。盐酸一镁粉反应显红色,Molish反应为阴性。提示该化合物为黄酮苷元。IR(KBr)vcm-1:v3264是羟基(OH)的伸缩振动吸收峰,v1661是羰基(C=O)伸缩振动吸收峰,v1611,1557,1512,1456是苯环的骨架伸缩振动吸收峰。核磁共振谱1H—NMR(600/哪-lz,DMSO-反)6ppm:86.18(1H,d,J=2.5Hz,H一6),66.40(1H,d,J=2.5Hz,H-8)为A环上的两个质子信号,,=2.5Hz表明A环上两位质子为间位偶合关系,分别为6位和8位质子信号,该化合物为5,7位二取代。66.88(1H,d,J=8.4Hz,H一57),67.54(1H,dd,J=8.4Hz,1.6Hz,H一6’),67.67(1H,d,j=1.6Hz,12.49(1H,brs)为黄酮化合H-27)为B环上的三个质子信号,为1,3,4三取代,6物A环5位羟基质子信号,610.78(1H,S)为A环7位羟基质子信号,69.58(1H,S,4’一oH),69.36(1H,S,3一oH),69.30(1H,S,37一OH)为47,3,37的三个羟基质子信号。13C-NMR(150MHz,DMSO-吐)6ppm:6176.0处的信号为羰基碳信号,6164.0,160.9,147.9,146.9这四个碳由于与酚羟基相连化学位移较大。以上数据与文献H53报道的槲皮素相符,且与槲皮素标准品对照TLC(聚酰胺膜,50%乙醇为展开剂,1%--氯化铝乙醇液显色)Rf值一致,混和熔点不下降,故确定化合物XII为槲皮素(quercetin)。化合物XIII:黄色粉末(氯仿,甲醇),ESI-MS:正离子检测:317[M+H]+,339[M+Na]+,负离子检测:315[M-H]一。分子量为326,结合1H—NMR和13C—NMR推出其分子式为C。6H,。0,。HCl—Mg粉反应阳性,Molish反应阴性,I%AICI。乙醇试液显黄色荧光,提示该化合物为黄酮苷元。1H—NMR中有612.47(S)、10.79(s)、9.76(S)、9.46(S)四个羟基信号,又有66.48(d,J=2)和66.20(d,J=2),没有3位的特征氢信号,说明该黄酮有3,5,7位取代,另外还有1H—NMR6:3.85(S)和13C—NMR6:56.2,说明分子中有一甲氧基。将1H—NMR和”C—NMR数据与槲皮四山东省医学科学院研究生毕业论文四素相对照,萁矗环和C环数据一致,说明甲基在8环上,1H-NMR上有S7.76(d,户2),67.70(dd,户8.4,2Hz),66.94(d,J--8.4),说明B环上为37,4’取代,根据B环上1℃一NMR数据可以确定甲基是连在3’位,固鉴定该化合物为3’一甲氧基槲皮素(3’0-methylquercetin)。纯合物XIV=无色针晶(举醇),m.P.238-'-239℃,FeCl。反应呈鬻性,I%A1C1。乙醇试液显黄色荧光,。IR(KBr)Vcm-1:V3500(OH),3200,1651(C=O),1605,1580,1510。说明该化合物为一黄酮类化合物,丽HCl—Mg粉反应呈阴性,说明该化合物可能为异黄酮,这也可由1H-NMR中含有68.45(s,卜2)进一步证实。ESI-MS:茬离子检测:631[瓣州a】+,负离子检测:607[弘阅一,分子量为608,结合1H—NMR和13c—NMR推出其分子式为C描H。:O。。。从1℃一NMR中可以看到有两组糖的信号,将该化合物水解后,经TLC鉴定含有伊葡萄糖和拶一木糖。1卜NMR中有67.53(2H,S),67.03(2H,s)说明B环为4’位取代。另外还有66.98(S),除此之外1H-NMR中66~8再没有其它信号,说明化合物的矗环为三取代。从1H-NMR中还可以看到两个甲氧基信号63.80(3H,S),63.77(3H,S)和一5位羟基信号612.90(S)。65.05(1H,.7--7.2)位为D—Glc端基质子,64.18(撼,J-7.2)位为D-Xyl端基质子,显示为13构型连接。综合以上数据,查阅相关文献∞朝鉴定该化合物为葛花菅(kakkalide)。化合物XV:淡黄色针晶(氯仿,甲醇),111.P.>360℃,Molish反应呈阳性。ESI-MS:正离子检测:485[M+Na]+,463[黔H]+,负离子检测:461[舻羽+,分子量为462,并且有m/z147碎片离子峰,从13C—NMR中可以看出有一组甲基五碳糖的信号,可以证实这一碎片离子为糖。结合1H-NMR和驺C—NMR推出其分子式为C:,H。。0,。,Q=13。为其红外光谱中显示有羟基(3422cm-1),共轭内酯羰基(1743cm-1)和芳环(1606cffl,1493cm-1)特征峰。将该化合物水解后,经TLC鉴定含有a-L-鼠李糖。1H—NMR中61。13(3H,d,户6.18)为鼠李糖上甲基,65.48(1H,s)鼠李糖端基质子,这一点也可由HMBC谱证实,该质子信号与1℃一NMR中6146.8碳信号相关,也说明糖是与萤元的6146.8碳相连。64。04(3H,s)为一甲氧基信号,67.73(IH,s),67.51(1H,s)为芳环上的氢。从HMBC谱中可以看到67.51氢与6111.2、159.1、153.1、140.5、113。4碳信号相关,丽羟基信号610.8(s)与6153.1、111.9、140.5碳信号相关,我们可以得到以下结构片断A。剩余的片断应该是一个连有羟基、糖和酰氧基的苯环,根据整个分子的不饱和度,两个片四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四断之间应该有两个环,从HMBC谱中可以看到57.73氢与5146.8、159.1、141.6、111.9、114.7碳信号相关,可以得到片断B或C。通过查阅文献,可以鉴定该化合物为鞣花酸类的一化合物,综合所有信息,鉴定该化合物为3’一沪甲基鞣花酸一4一沪仅一L一吡喃鼠李糖苷(3'-O-methyl.ellagic"acid.4.O-a.L.rhamnicoside)。1OR4l,掣pR10R2B-Rl=rhamnopyranoseR2iH片断A片断B和CC-R1_HR2=rhamnopyranose.化合物XVI:黄色结晶(甲醇),m.P.234℃~236℃,FeCl。、HCl一Mg粉反应阳性,I%AICI。乙醇试液显黄色荧光,说明该化合物为黄酮类化合物。ESI—MS:正离子检测:471[M+Na]+,负离子检测:447[M-H]-9分子量为448,结合1H—NMR和13C—NMR推出其分子式为C:。H:。0。。。1H—NMR中66.43(1H,d,J=2.0),6.79(1H,d,J=2.0)分别为6位和8位氢,6.95(2H,d,J=9.0),8.07(2H,d,J=9.0)分别为B环上37,5’和2’,67氢。9.42(1H,S)为47一oH,12.47(1H,S)应该为5一oH,还‘剩一个羟基信号应该在3位或7位,和山柰酚的信号比较,可以证明其在3位。13C-NMR中显示有一组葡萄糖的信号,由此可以鉴定该化合物为山柰酚一7一O-13一D一吡喃葡萄糖苷(kaempferol一7.D书一D-glucopyranoside)2.3.2化合物结构鉴定数化合物I:正三十一烷(Hentriantane)无色鳞片状结晶(石油醚),m.P.62~64℃。IR(KBr)Vcm-1:2956,2917,2849,1473,1463,728,718。EI-MS(m/z):436[矿],393,379,365,351,337,323,309,281,267,253,239,225,211,197,183,169,155,141,125,113,99,85,71,57。化合物II:B一谷甾醇(13-Sitoster01)无色针状结晶(石油醚),m.P.137~139℃。IR(KBr)vcm-1:3430,2936,2852,1464,1382,1368,959。化合物III:羽扇豆醇(Lupe01)无色针状结晶(石油醚),m.P.214,---215℃。1H—NMR(600Hz,CDCI。):60.78,.27.四山东省医学科学院研究生毕业论文四0.81,0.85,O.96,0.98,1.05(各3H,s,为23,24,25,26,27,28位角甲基质子):1.70(3H,s,CH。一30),2.39(1H,dt,户5.9,11.1nz,n一19),3.20(1H,dd,J三4.8,11.5Hz,n一3Q),4.58(1H,m,H一29)和4.70(1H,d,J--2.4Hz,H-29).13C-NMR(150nz):638.4(C-1),27.2(C一2),78.7(C二3),38.6(C一4),55.0(C-5),18.0(C-6),34.0(C-7),40.6(C一8),50.2(C一9),36.9(C一10),20.7(C-11),24.9(C一12),37.8(C一13),42.5(C一14),27.1(C一15),35.3(C-16),42.7(C-17),47.7(C一18),48.0(C一19),150.6(C一20),29.6(C一21),39.7(C-22),27.7(C-23),15.1(C一24),15.8(C一25),15.7(C一26),14.3(C-27),17.7(C一28),109.0(C一29),19.0(C一30).化合物IV:豆甾-4-烯一3,6一二酮(enedione)白色片状结晶(石油醚),m.P.161~162℃。1H—NMR(600Hz,CDCls):66.17(s,H一4),0.72(s,18一CH。),1.16(s,H一19),O.93(d,J=6.5Hz,21-CH。),O.84(d,,=7.1Hz,26一CH3),0.81(d,,=7.0Hz,27一CH3),O.84(t,,=7.1Hz,29-CH。):13c—NMR(150nz,CDCl3):635.51(C一1),33.97(C一2),199.55(C-3),125.44(C-4),161.07(C-5),202.42(C-6),46.82(C一7),39.10(C-8),50.95(C-9),34.19(C一10),20.85(C一11),39.81(C一12),42.5l(C一13),55.81(C-14),23.96(C-15),28.01(C一16),56.52(C一17),11.96(C一18),17.50(C-19),36.02(C-20),18.69(C一21),33.79(C一22),25.97(C一23),45.76(C-24),29.08(C-25),19.82(C-26),18.99(C一27),23.03(C一28),11.87(C-29)。化合物V:水杨酸(Salicylicacid)无色针晶(甲醇),111.P.158~160℃。1H—NMR(600Mttz,DMSO—d6):610.37(1H,s,2一OH),7.02(1H,d,J=8.4,n一3),7.53(1H,ddd,J=8.4,7.2,1.3Hz,H一4),6.94(1H,ddd,J=8.4,7.2,1.3Hz,H一5),7.94(1H,dd,J_-8.4,1.3Hz,n-6):13C-NMR(DMSO—d6,150MItz)6:117.9(C一1),162.2(C-2),111.2(C-3),137.0(C-4),119.6(C一5),131.0(C一6),174.9(COOH)。化合物VI:没食子酸(gallicacid)棕色针晶(甲醇),m.P.236~238℃。1H—NMR(DMSO-de,600N4z)6:6.93(2H,s,H-2,6),8.90(1H,brS,4一OH),9.21(2H,brs,3,5一OH),12.20(1H,brs,coon):”C—NMR(DMSO-d6,150Mttz)6:167.7(COOH),145.3(C-3,5),137.9-28—四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四(C一4),120.3(C—1),108.6(C一2,6)。化合物VII:香草酸(vanillicacid)白色针晶(甲醇),In.P.203~205℃。ESI—MS正离子检测:169[M+Hi+,负离子检测:167[M—H]一,分子量为168。1H—N—MR(DMSO-d6,600MHz)8i12.49(1H,S,COOH),9.84(1H,S,4一OH),7.41(1H,S,2-H),7.42(1H,dd,户8.4,2.OHz,H一6),6.81(1H,dd,户8.4,2.0Hz,H一6),3.79(3H,S,3-OCH。):13C-NMR(DMSO—d。,150MHz)6:167.1(COOH),150.9(C一4),147.1(C-3),123.3(C一6),121.4(C一1),114.9(C一5),112.5(C一2),55.4(3-OCH。)。化合物VIII:山奈酚(kaemfer01)黄色粉末(甲醇),m.P.274.0"--276.0℃。IR(KBr)Vam-1:VV3311,V1660,1613,V1508;1H—NMR(600MHz,DMSO-d6):612.48(1H,S,5-OH),lO.80(1H,S,7一OH),10.12(1H,S,47一OH),9.42(1H,S,3一OH),8.04(2H,d,J=8.6Hz,H一27,67),6.93(2H,d,J=8.6Hz,H一3’,57):C-NMR(DMSO—d。,150MHz)6:146.7(C-2),135.5(C-3),175.8(C-4),160.6(C一5),98.1(C一6),163.8(C一7),93.4(C一8),156.0(C一9),102.9(C一10),121.5(C—l’),129.4(c-2’),115.3(C-37),159.2(C一4’),115.3(C-57),129.4(C一6’)。化合物IX:山柰酚一3一D-B—D一6一D-(对羟基桂皮酰基)一吡喃葡萄糖苷[kaempferol一3—0一B—D一6-0一(p—hydroxycinnamoyl)一glucopyranoside]黄色粉末,m.P.234"--236℃。IR(KBr)Vcm-1:3700"-3000,1685,1608,1503,1460,1068;1H_NMR(DMSO-d。,600MHz)6:12.59(1H,S,5一OH),10.87(1H,S,7一OH),10.18(1H,S,4一OH),10.04(1H,S,7”一OH),8.01(2H,d,J=8.4HzH一27,H-6’),6.86(2H,d,J=8.9Hz,H一3’,H一5’),6.4(1H,d,J=1.9Hz,H一8),6.16(1H,d,,=1.9Hz,H一6),5.46(1H,d,J=7.5Hz,glcH一1),6.13(1H,d,J=16.0Hz,P—OH—CirH一2Ⅳ),6.80(2H,d,J=8.3Hz,P—OH—CinH-5",H一9Ⅳ),7.38(2H,d,P—OH—CinH一6Ⅳ,H一8"),7.35(1H,d,H-3"):”C-NMR(DMSO—d6,150MHz)6:156.2(C-2),132.9(C一3),177.3(C-4),161.0(C一5),98.7(C一6),164.0(C一7),93.6(C一8),156.3(C一9),103.8(C—i0),120.6(C一17),130.7(C一27),115.O(C一37),159.7(C-47),115.0(C一57),130.7(C-67),100.8(GlcC一1),.29.四山东省医学科学院研究生毕业论文四74.0(C一2),76.1(C一3),69.8(C一4),74.1(C一5),62.8(C-6),166.1(P—OH—CinC一1"),113.5(C一2"),144.5(C一3"),124.8(C一4"),130.0(C-5"),115.6(C一6"),159.7(C-7"),115.6(C-8"),130.0(C一9")。化合物XI:甲基肌醇(bomesit01)无色块状结晶,m.P.203,---205℃。1H—NMR(DMSO-d6)6:3.08(dd,1户9.5,2.9Hz),3.3(S.3H),3.67(1H,dd,J.-7.0,3.5Hz),3.86(1H,H,dd,户7.0,3.5Hz),4.36(d,J=4.6Hz),4.50(Ill,2H),4.68(m,2H):13C-NMR(DMSO—d6,150J州z)6:56.9(OCH3),67.9(CH),70.3(CH),71.9(CH),72.1(CH),73.1(CH),81.0(CH)。化合物XII:槲皮素(Quercetin)黄色粉末(丙酮),m.P.310~312℃。IR(KBr)V1611,1557,1512,1456,1356,1320,1247,121l,1cm-1:3264,2805,2342,1661,169,i093。1H—NMR(600删Z,DMSO-d6)6ppm:6.18(1H,d,,=2.5Hz,H一6),6.40(1H,d,J=2.5Hz,H一8),6.88(1H,d,,=8.4Hz,H一57),7.67(1H,d,,=1.6Hz,H一2’),7.54(1H,dd,,=8.3Hz,1.6Hz,H一6’),9.30(1H,S,37一OH),9.36(1H,S,3一OH),9.58(1H,S,47一OH),10.78(1H,S,7一OH),12.49(1H,brs,5-OH)。13C-NMR(150MHz,DMSO--d6)6ppm:145.2(C-2),135.9(C-3),176.0(C-4),160.9(C-5),98.3(C-6),164.0(C-7),93.4(C-8),156.3(C一9),103.2(C-lO),146.9(C-37),147.9(C一47),115.7,115.2(C一27和57),120.1(C-67)。化合物XIII:37一甲氧基槲皮素(37—0一methylquercetin)黄色粉末(氯仿,甲醇),1H-NMR(600MHz,DMSO-d6)6ppm:6.20(1H,d,J=2.0Hz,H一6),6.48(1H,d,,=2.0Hz,H一8),6.94(1H,d,,=8.4Hz,H一2Hz,H一57),7.76(1H,d,,=2.07),7.70(1H,dd,,=8.4Hz,2.0Hz,H一6’),9.46(1H,S,3-OH),9.76(1H,S,4’-OH),i0.79(1H,S,7一OH),12.47(1H,S,5一OH)。13C—NMR(150MHz,DMSO—d。)6ppm-147.1(C一2),136.3(C一3),176.3(C-4),161.1(C一5),98.7(C一6),164.4(C-7),94.0(C-8),156.6(C-9),103.5(C一10),122.2(C—l’),116.0(C一27),149.2(C一3’),147.8(C-47),112.3(C一57),112.4(C一67).化合物XIV:葛花苷(kakkalide)。无色针晶(甲醇),m.P.238"-'239℃,13C-NMR(150E-Iz,DMSO-d6)6ppm:155.5(C一2),123.3(C-3),181.2(C-4),153.3(C-5),132.9(C-6),157.0(C-7),94.7-30一四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四(C一8),153.0(C一9),107.0(C一10),122.2(C一17),130.7(C一27),114.2(C-37),159.7(C一47),114.2(C一5’),130.7(C一67).100.6(GlcC一1),73.5(C-2),77.0(C一3),70.2(C一4),76.2(C一5),69.1(C一6).104.6(XylC—1),73.9(C一2),77.0(C一3),69.9(C一4),66.1(c-5).60.8(6一OCH。),55.6(47一OCH。):1H—NlVlR6ppm:6.98(1H,S,n一8),8.45(1H,Sn一2),7.53(2H,d,J=8.7Hz,H~27,6’),7.03(2H,d,J=8.7Hz,H一3’,57),9.46(1H,S,3一OH),9.76(1H,S,4’一OH),10.79(1H,S,7一OH),12.90(1H,S,5一OH),3.80(3H,S,6-OCH。),3.77(3H,S,47一OCH。)。Glc:5.05(1H,d,J=7.2Hz,H一1),3.35(1H,m,H一2),3.33(1H,m,H一3),3.2l(1H,m,H-4),3.62(1H,m,H一5),3.64(1H,m,H一6a),3.93(1H,m,H一6b),Xyl:4.18(1H,d,J=6.0,H—1),3.01(IH,m,H一2),3.07(1H,m,n-3),3.32(州,m,H一4),2.96(1H,m,H一5a),3.71(1H,m,H-5b),除此之外,65.48"-"64.90的其它信号为糖上的羟基氢信号。化合物XV:37一D_甲基鞣花酸一4一(7-Q-L-吡喃鼠李糖苷(3’一0一[]ethyl—ellagicacid一4一O-Q—L—rhamnicoside)淡黄色针晶(氯仿,甲醇),m.P.>360℃。1H—NMR(600MHz,DMSO—d。)6ppm:11.1l(1H,S,3一OH),10.8(1H,S,4’一OH),7.73((1H,S,H-5),7.51((1H,S,H-57),4.04(3H,S,370CH3),Rha:5.48(1H,S,n-1),3.53(1H,m,n-2),4.0l(1H,S,n-3),3.32(1H,m,H-4),3.85(1H,d,H一5),1.14(3H,d,n-6),4.73~5.12为糖上的三个羟基氢;13C—NMR(150MHz,DMSO-d。)6ppm:114.7(C一1),141.6(C一2),136.5(C一3),146.8(C一4),107.6(C一5),111.9(C一6),159.1(C-7),113.4(C-17),142.2(C-27),140.5(C-3’),153.1(C-4’),111.9(c-57),111.2(C-67),159.1(C一77),61.4(3’一OCH。),Rha:100.5(C-I),70.4(C一2),70.5(C一3),72.0(C-4),70.3(C一5).化合物XVI:山柰酚一7一O-0一D一吡喃葡萄糖苷(kaempferol一7.伊p—D.glucopyranoside)黄色结晶(甲醇),m.P.234℃~236℃,1n—NMR(600MHz,DMS0--d。)6ppm:12.47(1H,S,5一OH),9.42(1H,S,47一OH),10.11(1H,S,3一OH),6.43(1H,d,J-_2.0,H一6),6.79(1H,d,J=2.0,H-8),6.95(2H,d,户9.0,n一37,57),8.07(2H,d,]--9.0,H一27,6’),5.30(1H,d;户4.8,GlcH一1).13C-NMR(150MHz,DMSO--d6)6ppm:147.7(C一2),136.1(C-3),176.2(C-4),161.5(C-5),99.0(C-6),162.8.31.四山东省医学科学院研究生毕业论文四(C-7),94.5(C-8),155.9(C一9),104.8(C一10),121.6(C一1’),129.7(C一27),115.6(C-3’),159.5(C-4’),115.6(c-57),129.7(C-67),100.1(GIcC—1),73.2(C-2),76.6(C-3),70.0(C一4),77.3(C一5),60.8(C一6)。2.4胡颓子叶挥发油化学成分的气相色谱一质谱联用分析在对胡颓子叶化学成分分离过程中,发现其石油醚萃取部位含有大量挥发油,然而到目前为止,还未见有关其挥发油成分的研究报道。为了更好地了解胡颓子叶的化学成分,利用GC-MS技术对常规水蒸汽蒸馏法制备的胡颓子叶挥发油的化学组成进行了研究,以期为胡颓子叶的开发利用提供进一步的实验依据。2.4.1材料2.4.1.1药材胡颓子叶购自安徽毫州敬德药业,经本所天然药物研究室鉴定为胡颓子科植物胡颓子(E]aeagnuspungensThunb.)的干燥叶。粉碎成粗粉,备用。2.4.1.2仪器与试剂TraceGC-TraceDSQ气相色谱一质谱联用仪(美国热电公司,配Xcaliburl.3工作站);无水乙醚,乙酸乙酯(AR,重蒸);无水硫酸钠(550℃,烘烤4h)2.4.2方法与条件2.4.2.1挥发油的提取称取lOOg胡颓子叶粗粉,置圆底烧瓶中,按常规水蒸汽蒸馏法提取10h,得馏出液600mL左右。无水乙醚萃取3次,每次150mL,合并萃取液,加入lOg无水Na。S04干燥12h以除去水分。过滤,所得滤液减压蒸馏除去溶剂得黄色透明油状液体,具浓郁特殊香味,出油率为0.3%(w/w)。挥发油用乙酸乙酯溶解,O.45um微孔滤膜过滤。2.4.2.2分析条件色谱条件:BD-5MS色谱柱(30mX0.25mmX0.251.1m,J&w公司);进样量1uL;载气:高纯氦气,流量lmL/min;柱温:50℃,以8℃/min升至250℃,保持20min;进样口温度:230℃,不分流进样。质谱条件:离子源(EI)温度:250℃,电子轰击能量70eV,传输线温度250℃,扫描质量范围m/z:20"--600,溶剂延迟时间3min。2.4.3结果2.4.3.1对提取得到的胡颓子叶挥发油样本进行GC—MS分析,其总离子流图(见图2.6)共分离得到46个峰。2.4.3.2通过检索Replib质谱图库,结合人工谱图解析,并查对有关质谱资料m’四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四371,从基峰相对丰度等几个方面进行比较,从而鉴定其结构,并通过峰面积归一法确定各成分的相对百分含量,鉴定出其中的30种化学成分(如表2.2所示),占总挥发油成分的87.15%。Rt0.∞一45.03图2.6胡颓子叶挥发油的GC-MS分析总离子流图表2.2胡颓子叶挥发油的化学成分及相对含量编号1234567891012131415161718192021222324252627282930船IN/m时in9.18…名称…誓器CJ-I—e02Cd-hOCTH.NO。C9H·.02CgH,002Ct0Hz002C8H80。Ctsll220C-oH-z02C-,H。zOzCt3HzoOzC-0H,-0。c。lHl60。ⅥⅡ116u21441201391581501721521941641862081621802002142062282682262422562702962803242903383523660.580.600.262.150.900.980.720.270.260.190.350.575.447.830.840.423.030.480.310.5230.970.510.8126.760.230.360.200.210.17辛酸10.00苯并呋喃10.182.乙基.3.甲基.马来酰亚胺11.05壬酸11.514一乙烯基一2一甲氧苯酚12.52癸酸12.99香草醛13.68香叶基丙酮13.772一甲氧基4-丙烯基酚14.04十一碳酸14.2915.0315.205.6.环氧化-13.紫罗兰酮5一羟基-3-甲基茚酮一1。¨名u(4H)苯并呋喃C-她.0。15.77十二碳酸C,此扣z16.31十三碳酸16.973.氧化.13一紫罗兰酮C。3H。80。C-。Hz80z18.43十四碳酸19.346,10,14一三甲基十五酮-2C。。H36019.47十四碳烯酸一1CttH260219.70十五碳酸CtsH2002C。6H320z21.24十六碳酸22.17十七碳酸Ct,H340z22.67叶绿醇Cz扎0023.26十八碳二烯酸/亚油酸C。8H3如C”I-14824.76二十三烷25.03甲氧基肉桂酸辛酯C。llH:。03C。。H5025.89二十四烷C2d-Isz27.27二十五烷28.98二十六烷Cz6H5I5,6,、乙2警化一4,4,7a·三甲基一2四山东省医学科学院研究生毕业论文四2.4.3.3分析数据显示胡颓子叶挥发油的主要成分为脂肪酸类化合物(74.57%)。其中十六碳酸的含量最高(30.97%),其次为十八碳二烯酸(26.76%),再次是十二碳酸(7.83%)。芳香烃(6.04%)、烷烃(O.81%)、醛(O.72%)、酮(2.32%)、酯(0.36%)、酚(1.16%)、醇(O.81%)和胺类(O.26%)等所占的比例较小。2.4.4讨论上述分析结果表明,胡颓子叶挥发油中主要化合物为十六碳酸、十八碳二烯酸和十二碳酸,三者占总挥发油成分的65.56%。胡颓子叶挥发油中脂肪酸类化合物居多,这与一般植物挥发油成分中都含有大量的萜类和芳香化合物不同。与同科沙棘属植物沙棘的挥发油成分相近似啪一钉,主要成分均为脂肪酸类化合物,且亚油酸和棕榈酸的含量都很高。挥发油是一类重要的活性成分,除了用于医药行业,还应用于香料、化妆品和烟草行业,近年来不断有各种挥发油新作用及新应用的报道。胡颓子科共有两个属,沙棘属和胡颓子属,沙棘属植物已经得到了广泛的开发与研究,而胡颓子叶作为珍贵的药食两用药材,无论从深度还是广度来说都有待于开发和研究。为充分发挥我国中药资源丰富的优势,开拓新药源,本文应用GC—Ms技术对胡颓子叶的挥发油成分进行了研究,以期为胡颓子叶的开发利用提供进一步的实验依据。四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四第三章胡颓子叶生物活性的初步研究3.1胡颓子叶提取物的祛痰作用的试验观察3.1.1胡颓子叶的提取对胡颓子叶以50%的乙醇分别以12倍量和10倍量提取2次,每次煎煮2个时,合并滤液回收溶剂。药渣再加10倍量水前煎煮2小时,与前述浓缩液合并继续浓缩,浓缩到一定程度加10倍量水沉淀,上清液浓缩,沉淀混悬,分别送去药理试验室做祛痰作用试验。3.1.2胡颓子叶提取物祛痰作用试验选用昆明种雄性小鼠30只,体重20-229,随机分为胡颓子叶A提取物组(769/kg)、B提取物组(569/kg)和正常对照组。每日灌胃给药一次,连续7天,灌胃体积0.5mL/209,对照组灌胃等体积的蒸馏水。末次给药后30分钟,分别腹腔注射5%酚红生理盐水0.5mL/209,30分钟后颈椎脱臼处死,迅速用5%NaHCO。灌洗小鼠气管、支气管3次,每次0.5mL,收集灌洗液共1.5mL离心。表3.1胡颓子叶提取物的祛痰作用(X±SD,n=lO)·P<O.05,与对照组比较从表中结果可以看出,胡颓子叶B提取物组(569/kg)酚红分泌量与对照组比较有明显增高,说明胡颓子叶B提取物可以增加气管、支气管粘膜的分泌功能,使痰液粘度下降,易于咳出,从而起到祛痰的作用。A提取物组(769/kg)有增加气管、支气管粘膜的分泌功能的趋势,但与对照组相比无显著差别。胡颓子叶A提取组与B提取物组相比,无明显差别。故最终使用哪种工艺,需要斟酌。药物剂量确定:A提取物组:1IIlL药液相当于生药3.059,原液稀释后给药lmL。B提取物组:lmL药液相当于生药2.249,由于有沉淀,原液无法给药,故四山东省医学科学院研究生毕业论文四对倍稀释后给药1IIlL。3.2山柰酚一3一沪13一D-6一D.(对羟基桂皮酰基)一吡喃葡萄糖苷内皮细胞保护作用的观察摘要:观察山柰酚一3.O-13.D.6.o-(对羟基桂皮酰基).吡喃葡萄糖苷对体外培养的人脐静脉内皮细胞株ECV304白蜘胞保护作用,经过初筛、复筛,结果显示该样品均对H202所致内皮细胞损伤无保护作用;却有细胞毒性作用,显示其可能有抗肿瘤活性。3.2.1材料与方法3.2.1.1药品及试剂:供试样品(Fu.1)是从胡颓子叶分离纯化得到的山柰酚.3.O-13…D6O一(对羟基桂皮酰基).吡喃葡萄糖苷纯品,该样品用二甲基亚砜溶解,以PBS配成lmM母液贮存。用时以培养基稀释成所需浓度。RPMll640培养基:美国GIBGO公司生产。二甲基亚砜:天津化学试剂一厂,批号:970821。MTT.-Sigma公司生产,山东生化试剂中心分装。其它试剂为国产分析纯。3.2.1.2细胞:ECV304内皮细胞系由本室传代保存,使用含10%dx牛血清的RPMll640培养基,置C02培养箱内培养。3.2.1.3仪器:Forma311l水套式二氧化碳培养箱:美国Forma公司生产。Wallacl420多功能标记分析仪、96孔板:丹麦制造。3.2.1.4细胞培养及药物作用:取指数生长期的细胞经洗涤后,用O.125%胰酶消化计数,调整细胞数5×104/mL接种于96孔板内,每孔O.15mL,置C02孵箱内培养。24小时后加药。供试样品浓度均为50肛M;作用30min后,加入损伤剂H202致终浓度为150pM。每个浓度设1个复孔,并设空白对照和损伤模型。37℃二氧化碳孵箱内培养16小时,以MTT法测定OD值,检测细胞的存活陋捌。3.2.1.5细胞存活率的计算:细胞终止培养后,每:J:LjJn入101.tLO.5%MTT置C02孵箱,4小时后倾去孔内液体,每:J:UJn入二甲基亚砜0.2mL,充分振荡使蓝紫色甲臌溶解。于多功能标记分析仪测定OD560。以OD560的均值表示细胞存活活性。四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四3.2.2结果模型组以H202孵育内皮细胞16小时后,细胞形态发生明显的变化,细胞皱缩、变圆的比例增加,出现大量漂浮细胞(图片未列出),表明模型成功。对细胞存活活性检测表明,对照组细胞生.长正常,细胞的存活数明显高于H202模型组。Fu-1样品处理后,细胞损伤比模型组加重,说明该样品在损伤处理状态下有细胞毒性的作用。1.401.201.000.800.600.400.200.00COltModFu_l图3.1药物对H202所致细胞存活活性的影响}P<0.05,与模型组相比3.2.3讨论本试验中我们首先进行了H202对ECV304细胞不同损伤程度的试验,结果显示H202可浓度依赖性的使内皮细胞损伤加重,1009M以至4501.tM损伤16hr可造成不同程度的内皮损伤模型。本试验选择了150和4001.tM分别作为轻度和重度的损伤模型,结果显示该浓度的模型很成功。同时对药物准备来看,本试验采用了高温灭菌的方式对药物进行除菌。其优点是可节省药物,效率高。但其不利的一面是对容易氧化的药物易使其在高温过程中产生氧化。结果显示供试样品对内皮细胞无内皮保护作用,相反该样品(Fu-1)却有细胞毒性作用,推测这两药可能具有抗癌活性。建议下一步验证对肿瘤细胞的细胞毒活性和其对肿瘤动物模型的抗癌活性。3.3五种样品对体外肿瘤传代细胞株细胞毒作用的试验观察摘要:观察五种样品对体外肿瘤传代细胞株I-lela(^撬)、SGC-7901(人胃癌)2种细胞细胞毒的作用。通过对2种样品(浓度为100ug/mL)初试结果,选择对细胞SGC-7901(人胃癌)和I-Iela(^毓)有一定的抑制作用,其IC50值见下表。以上细胞抑制率在40%以上样品做复试。复试结果5个样品分别对体外肿瘤传代四山东省医学科学院研究生毕业论文四3.3.1材料3.3.1.1药品及试剂:5种样品由从胡颓子叶分离纯化得到,分别用二甲基亚砜溶解,用含15%小牛血清RPMI1640培养基配成lmg/mL。用时稀释成所需浓度。RPMll640培养基:美国GIBGO公司生产。二甲基亚砜:天津化学试剂一厂,批号:970821。MTT:Sigma公司生产,山东生化试剂中心分装。3.3.1.2细胞:Hela(人害霸畜)、SGC-7901(人胃癌)细胞系,均由药哩彭靳糯使辟拾15%小牛血清的RPMll640培养基,置C02培养箱内培养。3.3.1.3仪器:Forma311l水套式二氧化碳培养箱,美国Forma公司生产。Wallacl420多功能标记分析仪,美国。96孔板:丹麦制造。3.3.2方法3.3.2~细胞培养及药物作用:Hela(人撬)、SGC-7901(人勖高)细懒为贴壁细胞,取其指数生长期的细胞经洗涤后,用0.25%胰酶消化后计数,调整细胞数为1×105/mL接种于96孔板内,每孔O.1IIlL,置CO。孵箱内培养。培养24小时后加药。受试物用二甲基亚砜溶解用含15%d、牛血清RPMll640培养基配成lmg/mL。作用于Hela、SC,C-7901受试药物的最高剂量组药物浓度均为100按2倍依次稀释至6.251.tpg/mL,g/mL,共5个剂量组。每个浓度设三个复孔,并设空白对照孑L。在37℃二氧化碳培养箱内培养48小时后,用MTT方法测定OD值,计算细胞抑制率。3.3.2.2细胞抑制率的计算:细胞终止培养后,每孔加入10uL0.5%MTT置C02孵箱内,4小时后取出倾去孔内液体加入二甲基亚砜(O.2IIlL/孔),充分振荡,使蓝紫色甲躜溶解,于多功能标记分析仪530nm波长处记录OD值,采用不同浓度受试药物三复孔oD值的均值计算细胞的抑制率及IC50。见下表。表3.2五种样品对不同细胞株的初试抑制作用及IC50四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四注:山柰酚一3一D_B—D一6一D-(对羟基桂皮酰基)一吡喃葡萄糖苷(W6)、葛花苷(W7)、甲基肌醇(W8)、37一D-甲基鞣花酸-4-a-L-鼠李糖苷(w9)、37一甲氧基槲皮素(WlO)。3.3.3结果试验结果表明5个样品均对体外肿瘤传代细胞SGC-7901(人勖毫)和Hela(人宫颈癌)有抑制作用。其中W6和WlO两个样品有明显的细胞毒作用(根据新药临床前研究指导原则H引,植物提取物IC50≤30ug/mL认为有一定细胞毒作用)。建议课题组对样品的化学结构及特性进一步了解,对其样品进行其它药理活性筛选。四山东省医学科学院研究生毕业论文四结语本研究论文主要获得如下阶段性研究成果:1、对国内外关于胡颓子属植物的化学成分、药理活性和药用价值方面研究成果进行了简要的文献综述,并在此基础上设计了研究方案,确定了研究内容。从胡颓子叶的乙醇提取液中分离得到18个化合物,通过理化常数测定和光谱数据分析等手段鉴定了其中16种化合物的结构,分别正三十一烷(I),B.谷甾醇(II),羽扇豆醇(III),豆箔一4一烯一3,6一二酮(Ⅳ),水杨酸(v),没食子酸ⅣI),香草酸(VII),山柰酚(VIII),山柰酚一3-O-B…D6o-(对羟基桂皮酰基)一吡喃葡萄糖苷(田,甲基肌醇(X),胡萝卜苷CXI),槲皮素CxII),37一甲氧基槲皮素(XIII),葛花苷(xiv),3’.O-甲基鞣花酸.4一O-a.L.鼠李糖苷QW),山柰酚一7—0--B—D一吡喃葡萄糖苷(XVI)。其中,化合物Ⅳ,V,VI,VII,VIII,IX,XI,XlI,XlII,XIV,XV,XVI为首次从胡颓子叶中分得,化合物XVlI,XVIII的结构正在鉴定中。2、另外还分析了胡颓子叶挥发油的成分,并从鉴定了其中的30种成分。3、对胡颓子叶提取物和从中分得的主要化合物做了初步的生物活性筛选,为以后胡颓子叶的进一步开发奠定了一定的基础。四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四参考文献[1]中国科学院植物志编辑委员会中国植物志,第五十二卷第二分册北京:科学出版社,1983,卜66.[2]彭国全,季梦成江西胡颓子属植物资源及开发利用研究江西农业大学学报,2004,26(1):64—67.[3]陈新,川渝地区胡颓子属药用植物资源研究成都中医药大学学报,2001,24:40-42.[4]BekkerNP,GlushenkovaAI.ComponentsofcertainspeciesoftheE1ofae—agnaceaefamily.ChemistryNaturalCompounds,2001,37(2):97—116.[5]李兆琳,陈宁,薛敦渊,等沙枣花挥发油化学成分的研究高等学校化学学报,1989,l0(8):806—807.[6]刘哗伟,邸多隆,王勤.沙枣花挥发油的化学成分及其指纹图谱韵研究食品科学,2003,24(7):11卜113.[7],刘泽鹰,王沙枣树药用价值和有效成分研究的进展.中草药,1986。17(7):41—44.[8]PellegriniC,WeberM,BorschbergHJ.Totaland(一)一isoelacomine,twoE]aeagnussynthesisof(+)一ElacominehithertounnamedOxindoleAlkaloidfromcommutata.Helv.Chim.Acta,1996,79(1):15卜168.[9]江发涛,谢建新,刘金荣,等.沙枣的营养成分分析及沙枣油的理化常数测定.石河子大学学报(自然科学版),2002,60:20—22.[10]TagaharaK,KoyamaJ,SugitaT,eta1.ConstituentstheconstituentsofofthegenusElaeagnus(I):Onge_订s.ShoyakugakutheleavesofE]aeagnuspunZasshi,1981,35(4):340—342.[11]CaoSG,ToshiyukiT,MizuoM,eta1.FlavoneglycosidesfromE]aeagnusProductLetters,2001,1Bockii(E]aeagnaceae).Natural5(1):卜8.[12]CaoSG,ToshiyukiT,MizuoM,eta1.FlavoneglycosidesfromProductLetters,2001,15E]aeagnuslancellata(Elaeagnaceae).Natural(4):211-216.[13]汪维云、高学玲.胡颓子属植物营养成分的测定和研究.天然产物研究与开.4l-四山东省医学科学院研究生毕业论文四发.1996(3):52---55.[14]ItoH,MikiK,YoshidaT.ElaeagntinsA—G,C-GlucosidicE1tagitanninsfromE]aeagnusunbellata.ChemPharmBull,1999,47:36—542.[15]RawatU,SatiSC,Sati0P,eta1.AnthraquinoneglycosidefromE]aeagnus.umbellataThunb.JournaloftheIndianChemicalSociety,2002,79(4):383—384.[16]李玉山,李田,谭志鑫.长叶胡颓子降血糖、血脂及抗脂质过氧化作用的研究安徽医药,2005,9(7):489—491.[17]肖本见,谭志鑫,李玉山.富硒长叶胡颓子根皮抗炎镇痛作用的试验研究,时珍国医国药,2005,16(4):315—316.[18]AhmadianiA,HosseinyJ,SemnanianS,eta1.AntinociceptiveandantiinflammatoryeffectsofE]aeagnusangutifliafruitextract.JournalofEthnopharmacology,2000,72:287—292.[19]RamezaniM,HosseinzadehH,DaneshmandN.AntinociceptiveeffectOfE/aeagnusangutniafruitseedsinmice.Fitoterapia,2000,72:255—262.[20]HosseneinzadehH,RamezaniM,NamjoN.MusclerelaxantactivityofE/aeagnusangutifliaL.fruitseedsinmice.JounralofEthnopharm-acology,2003,84:275—278.[21]GurbuzI,Ustun0,YesiladaE,eta1.Anti—ulcerogenicactivityofsomeplantsusedasfolkremedyinTurkey.JournalofEthnopharm-acology,2003,88:93—97.[22]伍杨,邓明会,林平.胡颓子熊果酸对小鼠免疫功能的影响.四川I中医.2006,24(3)35~36.[23]李玉山.长叶胡颓子多糖对TNBS诱导大鼠结肠炎作用的研究.四川中医.2006,24(5):24~25.[24]SholichinM,eta1.13CNuclearmagneticresonanceoflupine—typetriterpenes,lupeol,betulinandbetulinicacid[J].ChemPharmBull,1980,28(3):1006—1008.[25]袁久志,孙启时.蒙古栎化学成分的研究[J].中国中药杂·42—四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四志,1998,23(9):548—549.[26]毛士龙,桑圣民,劳爱娜,等.宝兴矛甾体成分研究[J].天然产物研究与开发,2000,12(5):14—16.[27]周伯庭,李新中,徐平声,等.广东紫珠地上部位化学成分研究(I)[J].中南药学,2004,2(4):238—239.[28]尹凯,高慧嫒,李行诺,等.皱皮木瓜的化学成分[J].沈阳药科大学学报,2006,23(12):760—763.[29]邹建华,杨峻山.短瓣金莲的化学成分研究[J].中国药学杂志,2005,40(i0):733—735.[30]周应军孙启时.巴东栎化学成分研究[J].沈阳药科大学学报,1999,16(3):194-197.[31]李宁,李铣,杨世林,等.过山蕨总黄酮的化学成分研究(1)[J].沈阳药科大学学报,2004,21(2):105—108.[32]钟海军,陈纪军,王惠英,等.翻白叶的化学成分[J].中草药,2000,31(7):488—490.[33]王明安,王明奎,彭树林,等.青檀树皮中的化学成分[J].天然产物研究与开发,2001,13(6):5-8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FlavonolglycosidesfromE]aeagnuslanceollata(Elaeagnaceae)[J].NatProdLett,2001,15(4):211~216.[11]赵鑫,朱瑞良,姜标等.胡颓子有效部位化学成分研究.中国中药杂志.2006,31(6):472---,473.[12]徐裕彬,国兴明,周杰等.牛奶子根化学成分的分离与测定.山地农业生物学报.2005,24(2):138,----141.[13]汪维云、高学玲.胡颓子属植物营养成分的测定和研究.天然产物研究与开发.1996(3):52~55.[14]陶晶、苏李等.抗逆性灌木树种银葛药用成分初步研究.吉林林业科技.2006,35(3):34~38.[15]李玉山、李田等.长叶胡颓子降血糖、血脂及抗脂质过氧化作用的研究.安徽医药.2005,9(7):489"-'491.[16]肖本见,谭志鑫,李玉山.富硒长叶胡颓子根皮抗炎镇痛作用的试验研究.时珍国医国药.2005,16(4):315~316.[17]张银娣,肖继震,唐瑜零等.胡颓子叶提取物平喘作用的初步研究[J].中草药,1981,36(总282页).E18]2a.江苏新医学院编.中药大词典[M].上海:上海人民出版社,1975;[19]陈新.川渝地区胡颓子属药用植物资源研究[J].成都中医药大学学报,2001,24(2):40"---42.[20]伍杨,邓明会,林平.胡颓子熊果酸对小鼠免疫功能的影响.四川中医.2006,24(3)35---36.[213李玉山.长叶胡颓子多糖对TNBS诱导大鼠结肠炎作用的研究.四川中医.2006,24(5):24"--25.四山东省医学科学院研究生毕业论文四攻读学位期间取得的研究成果[1]付义成,王晓静,贾献慧,李俊婕.胡颓子叶化学成分研究【J】.中草药,2008(5).胡颓子叶化学成分研究付义成王晓静宰李俊婕(山东省医学科学院药物研究所,山东济南250062)摘要:目的研究胡颓子叶的化学成分。方法采用反复柱色谱方法进行分离,利用化合物的光谱学数据结合理化性质鉴定化合物的结构。结果分离并鉴定了10个化合物:13.谷甾醇(I)、羽扇豆醇(II)、豆甾.4.烯.3,6.二酮(Ⅲ)、水杨酸(IV)、没食子酸(V)、香草酸(Ⅵ)、山柰酚(VII)、山柰酚.3.O.13…D合物III~Ⅸ为首次从该种植物中分离得到。关键词:胡颓子叶;化学成分;结构鉴定Studieson6o-(对羟基桂皮酰基)一吡喃葡萄糖苷(Ⅷ)、甲基肌醇(IX)、胡萝卜苷(X)。结论化chemicalconstituentsfromleavesofElaeagnuspungensFuYi—chengWangXiao—jing*LiJun—jie(InstituteofMateriaMedicaShandongAcademyofMedicalSciences,JinanShandong250062)ABSTRACT:Objectivepungens.MethodsTostudythechemicalconstituentsofleavesofElaeagnusTheconstituentswereisolatedbycolumnchromatographyandtheirstructureswereelucidatedbychemicalpropertiesandspectroscopicanalysis.ResultsTencomponentswereisolatedandidentifiedasB-sitosterol(1),lupeol(2),kaempferol一3一D…13identificationenedione(3),salicylicacid(4),gallicacid(5),vanillicacid(6),kaempferol(7),D6-O一⑦-hydroxycinnamoyl)-glucopyranoside(8),bomesitol3to9are(9),daucosterol(1O).ConclusionCompoundsElaeagnuspungensforthefirsttime.isolatedfromleavesofKeywords:leavesofElaeagnuspungens;chemicalconstituents;structural胡颓子叶异名蒲颓叶,为胡颓子属植物胡颓子(E]aeagnuspungensThunb.)的干燥叶,分布于长江流域以南各省区。胡颓子叶性:酸,平,无毒。《本草纲目》中记载“胡颓子叶治:肺虚,短气。"已报道的从胡颓子叶中分离出的化学成分主要有黄酮和生物碱。为研究胡颓子叶的化学成分与活性之间的关系,以更好地四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四利用这一丰富的药用植物资源,作者对胡颓子叶进行了系统的化学成分研究,从其乙醇提取物的石油醚及乙酸乙酯部位分离并鉴定了10个化合物,分别是13一谷甾醇(I)、羽扇豆醇(II)、豆甾一4一烯一3,6一二酮(Ⅲ)、水杨酸(IV)、没食子酸(V)、香草酸(Ⅵ)、山柰酚(Ⅶ)、山柰酚一3—0-13一D-6—0-(对羟基桂皮酰基)一吡喃葡萄糖苷(Ⅷ)、甲基肌醇(IX)、胡萝b苷(X)。化合物IⅡ~Ⅸ为首次从该种植物中分离得到。1仪器和材料熔点用X4型显微熔点仪测定(温度未校正);核磁共振用Bruker型核磁共振仪测定:质谱用AgilentTrapAcance600VL型质谱仪测定。柱色谱用硅胶为青岛海洋化工厂生产;色谱用试剂均为分析纯。柱色谱用硅胶(100,----200目,200"--300目),薄层色谱硅胶G、GF254、H(400目)均为青岛海洋化工厂生产。胡颓子叶于2006年购于济南药业集团有限责任公司中药饮片厂。经山东大学药学院生药学教研室陈沪宁副教授鉴定为E]aeagnus2提取和分离pungensThunb.的干燥叶。干燥的胡颓子叶15kg,用90%乙醇加热回流提取3次,浓缩,醇提物加水混悬后依次用石油醚、氯仿、乙酸乙酯和正丁醇反复萃取,得石油醚萃取物2959,氯仿萃取物1239,乙酸乙酯萃取物1239,正丁醇萃取物3509。将石油醚萃取物经常压柱层析,以石油醚.乙酸乙酯溶剂系统梯度洗脱,TLC检测,合并相同组分,再反复经硅胶柱层析得到化合物I~Ⅲ,乙酸乙酯萃取物以氯仿.甲醇溶剂系统梯度洗脱,最后得到化合物Ⅳ~X。3结构鉴定化合物I:白色针状结晶(丙酮),mp137.6~138"C。Liebermann-Burchard反应呈阳性。ESI.MS(m/z):414.2(M+),397.3(衍.OH,基峰)。与B一谷甾醇对照品薄层色谱Rf值及显色行为一致,且混合熔点不下降,化合物I鉴定为13一谷甾醇。化合物II:白色针状结晶(石油醚),mp.214"-'2150C。分子式C30HsoO,分子量为426。1H.NMR(600Hz,CDCl3):6O.78,O.81,0.85,O.96,O.98,1.05(各3H,S,为23,24,25,26,27,28位角甲基质子);1.70(3H,s,CI-13—30),2.39(1H,dt,./--5.9,11.1Hz,H一19),3.20(1H,dd,J=4.8,11.5Hz,H一3a),4.58(1H,m,H一29)和4.70(1H,d,户2.4Hz,H-29)."C-NMR(150Hz):638.4(C-1),27.2(C一2),78.7(C·3),38.6(C-4),55.0(C一5),18.0(C-6),34.0(C-7),40.6(C一8),50.2(C一9),36.9(C-10),20.7四山东省医学科学院研究生毕业论文四(C一11),24.9(C一12),37.8(C-13),42.5(C一14),27.1(C一15),35.3(C一16),42.7(C-17),47.7(C—18),48.o(c-19),150.6(C-20),29.6(C-21),39.7(C一22),27.7(C一23),15.1(C-24),15.8(C一25),15.7(C一26),14.3(C-27),17.7(C一28),109.0(C-29),19.0(C一30).以上数据与文献报道n’23的一致,故鉴定化合物II为羽扇豆醇。化合物IIh白色片状结晶(石油醚),Liebermann.Burchard试验呈阳性反应。mpl61---162。C;ESI—MS:正离子检钡wJ:427[M+H】+;负离子检i贝JJ:425[M—HI。,分子量426,分子式C29H4602;1H—NMR(600Hz,CDCl3):66.17(s,H一4),O.72(s,Hz,18-CH3),1.16(s,H-19),O.93(d,J=6.5Hz,21一CH3),O.84(d,,=7.126-CH3),0.81(d,J=7.0Hz,27一CH3),0.84(t,J=7.1Hz,29-CH3);1’C-NMR(150Hz,CDCl3):635.51(C-1),33.97(C一2),199.55(C一3),125.44(C-4),161.07(C-5),202.42(C-6),46.82(C-7),39.10(C-8),50.95(C·9),34.19(C一10),20.85(C—l1),39.81(C-12),42.51(C一13),55.81(C-14),23.96(C一15),28.01(C一16),56.52(C-17),11.96(C一18),17.50(C一19),36.02(C-20),18.69(C一21),33.79(C一22),25.97(C一23),45.76(C一24),29.08(c-25),19.82(C-26),18.99(C一27),23.03(C-28),11.87(C.29)。以上数据与文献报道∞1的一致,故鉴定化合物Ⅲ为豆甾.4一烯一3,6.二酮。化合物Ⅳ:白色针晶(甲醇),mpl58---160。C;ESI.MS正离子检测:139[M+H】+,负离子检测:137[M—H】。,分子量为138,结合碳谱和氢谱得分子式为C7H60。1H-NMR(600MHz,DMSO-d6):610.37(1H,S,2一OH),7.02(1H,d,户8.4,H-3),7.53(1H,ddd,,/--8.4,7.2,1.3Hz,H-4),6.94(1H,ddd,J--8.4,7.2,1.3Hz,H-5),7.94(1H,dd,J=8.4,1.3Hz,H-6);¨C-NMR(DMSO-d6,150MHz)6:117.9(C一1),162.2(C-2),111.2(C-3),137.0(C-4),119.6(C.5),131.0(C一6),174.9(COOH)。与已知文献报道H3的一致,鉴定化合物Ⅳ为水杨酸。化合物V:棕色针晶(甲醇),mp236~238。C;FeCl3显色反应呈阳性,ESI—MS以上数据正离子检测:193[M+Na】+,C7H605。负离子检测:169[M—H】。分子量170,分子式s,1H-NMR(DMSO-d6,600MHz)6:6.93(2H,s,H一2,6),8.90(1H,br4-OH),9.21(2H,brs,3,5一OH),12.20(1H,brs,COOH);”C-NMR(DMSO—d6,150MHz)6:167.7(COOH),145.3(C一3,5),137.9(C一4),120.3(C-1),108.6(C一2,6)。以上数据与己知文献报道畸1的一致.,鉴定化合物V为没食子酸。化合物VI:白色针晶(甲醇),mp203--一205℃;ESI—MS正离子检测:169[M+H】+,负离子检测:167[M—H】。,分子量为168。1H-N-MR(DMSO—d6,600—72·四胡颓子叶化学成分及药理活性研究四MHZ)6:12.49(In,S,coon),9.84(1n,S,4一OH),7.41(1H,S,2—0I-i),7.42(1H,dd,户8.4,2.0Hz,H-6),6.81(1n,dd,J--8.4,2.0Hz,H-6),3.79(3H,S,3-0CH3);”C-NMR(DMSO-d6,150Mnz)6:167.1(COOH),150.9(C_4),147.1(C一3),123.3(C.6),121.4(C一1),114.9(C一5),112.5(C一2),55.4(3-OCH3)。以上数据与己知文献报道嫡1的一致.,鉴定化合物Ⅵ为香草酸。化合物VII-黄色粉末(甲醇),mp274.0~276.O℃,盐酸镁粉反应呈阳性,示为黄酮类化合物。ESI-MS正离子检N-287[M+H】+,负离子检测:285[M-H】一,分子量286,分子式ClsHl006。1H-NMR(600MHz,DMSO-d6):612.48(1H,S,5-OH),10.80(1H,S,7一OH),10.12(1n,S,47-OH),9.42(1a,S,3-OH),8.04(2H,d/=8.6Hz,H-27,67),6.93(2H,d/=8.6Hz,H-37,5’);¨C-NMR(DMSO—d6,150MHz)6"146.7(C-2),135.5(C·3),175.8(C-4),160.6(C一5),98.1(C一6),163.8(C一7),93.4(C-8),156.0(C一9),102.9(C-10),121.5(C一17),129.4(C-27),115.3(C·37),159.2(C-47),115.3(C一57),129.4(C一67)。1H-NMR、13C-NMR.数据与文献报道口’83的一致,鉴定化合物Ⅶ为山柰酚。化合物Ⅷ:黄色粉末,mp234"--236℃,与盐酸.镁粉反应显红色。ESI—MS正离子检测:617[M+Na】+,负离子检测:593[M-H】。,分子量594,分子式C30H26013。1H—NMR(DMSO-d6,600MHz)6:12.59(1H,S,5-OH),10.87(1H,s,7-OH),10.18(1H,S,4-OH),10.04(1H,S,7Ⅳ一OH),8.01(2H,d,/=8.4H一27,H-6Hz7),6.86(2H,d,,=8.9Hz,H一37,H一57),6.4(1H,d,J=1.9Hz,gluHz,H一8),6.16(1H,d,,=1.9Hz,H-6),5.46(In,d,J=7.5Hz,P·OH—Cirp_oH-CinH-1),6.]3(1H,d,J=16.0H-2Ⅳ),6.80(2H,d,,=8.3Hz,P-OH-CinH一5",H一9Ⅳ),7.38(2H,d,H一6",H一8",H23Ⅳ),7.35(1H,d,H-3Ⅳ);13C-NMR(DMSO—d6,150MHz)6:156.2(C-2),132.9(C-3),177.3(C-4),161.0(C一5),98.7(C-6),164.0(C·7),93.6(C一8),156.3(C-9),103.8(C-10),120.6(C一1’),130.7(C-2’),115.0(C一37),159.7(C一4’,115.0(C-57),130.7(C一67),100.8(gluC一1),74.0(C-2),76.1(C-3),69.8(C-4),74.1(C一5),62.8(C-6),166.1(p—oH-CinC一1Ⅳ),113.5(C一2”),144.5(C-3Ⅳ),124.8(C一4’7),130.0(C一5Ⅳ),115.6(C-6Ⅳ),159.7(C.7’7),115.6(C一8’’),130.0(C.9Ⅳ)。1H-NMR、13C-NMR数据与文献报道M的一致,鉴定化合物Ⅷ为山柰酚.3一D.13…D6o-(对羟基桂皮酰基).吡喃葡萄糖苷。化合物Ⅸ:白色块状结晶,mp203"-205℃。H-NMR(DMSO—d6)6:3.08(dd,.73.四山东省医学科学院研究生毕业论文四1H,,/--9.5,2.9Hz),3.3(s.3H),3.67(1H,dd,./--7.0,3.5Hz),3.86(1H,dd,J--7.0,3.5Hz),4.36(d,J=4.6nz),4.50(m,2H),4.68(m,2H);¨C-NMR(DMSO—d6,150MHz)6:56.9(OCH3),67.9(CH),70.3(CH),71.9(CH),72.I(CH),73.I(CH),81.0(CH)。以上数据与己知文献报道n帕一致,鉴定化合物Ⅸ为甲基肌醇。化合物X:白色粉末(氯仿.甲醇),mp300,-一302"C,Liebermann.Burchard反应呈阳性。与胡萝b苷对照品薄层色谱Rf值及显色行为一致,且混合熔点不下降。化合物X鉴定为胡萝b苷。致谢:核磁共振数据由山东大学药学院任建、马斌老师代测,质谱数据由山东省医学科学院药物所刘拥军老师协助测定。Reference[1】SholichinM,eta1.¨CNuclearmagneticresonanceoflupine—typetriterpenes,lupeol,betulinandbetulinicacid【J】.ChemPharmBull,1980,28(3):1006-1008.【2】YuanJZ,SunQS.StudiesonchemicalconstituentsofQuercusmongolicaFisch【J】.ChinaJChinMaterMed(@国中药杂志),1998,23(9):548—549.[3】MaoSL,SangSM,LaoAN,eta1.SteroidconstituentsfromEuonymusmupinensis【J】.NaturalProductResearchandDevelopment.(天然产物研究与开发),1998,12(5):14-16.【4】ZhouBT,LiXZ,XuPS,eta1.ChemicalconstituentsfromtheupgroundofCallicarpakwangtungensisChun[J】.CentralSouthPharmacy(中南药学),2004,2(4):238-239.[5】YinK,GaoHYLiXN,eta1.ChemicalconstituentsofChaenomelesspeciosa(Sweet.)Nakai[J】.JofShenyangPharmaceuticalUniversity(沈阳药科大学学报),2006,23(12):760-763.[6】ZOUJH,YANGJS.StudiyonchemicalconstituentsofTrolliusledebouri[J】.ChinPharm,(中国药学杂志),2005,40(10):733-735.【7】ZhouYJ,SunQS.AStudyontheChemicalConstituentsofQuercusenglerianSeem阴.JofShenyangPharmaceuticalUniversity(沈阳药科大学学报),1999,16(3):194-197.[8】LiN,LiX,YangSL,eta1.StudiesonchemicalconstituentsofthetotalflavonoidsfromComptosorussibiricusRupr..(1)[J】.,ofShenyangPharmaceuticalUniversity(沈阳药科大学学报),2004,21(2):105—108.一74—四胡颓子叶化学成分及药理活性研究幽【9】ZhongHJ,ChenJJ,WangHYeta1.ChemicalInvestigationonPotentilla∥劳ithiivar.velutina[J】.ChineseTraditionalandHerbalDrugs(中草药),2000,31(7):488—490.[10】WangMA,WangMPteroceltisK,PengSL,ChemicalconstituentsfxomthebarksofProductResearchandtatarinowii阴.NaturalDevelopmentzz(天然产物研究与开发),2001,13(6):5-8..75.四山东省医学科学院研究生毕业论文四致谢首先向我尊敬的导师王晓静研究员表示衷心的感谢,感谢导师三年来在学习给予耐心指导和生活上给予无微不至关怀。导师为人正直、专业精深、治学严谨、高度敬业,这些使我得以知识增进,性格发展,让我终生受益。本实验的药理部分是在牟艳玲老师的指导下完成的,并得到了解砚英主任及药理室各位老师的大力帮助。在此表示我衷心的感谢。在实验过程中,丁杏苞老师、贾献慧老师、唐文照老师、杜成林老师、孙敏耀老师、刘拥军老师、白虹老师、王国荣老师、王晓飞师兄,薛晓霞师姐以及李俊婕、王姣、赵焕新、刘学杰、蒋雷、黄先丽等同学给予了诸多帮助,一并表示感谢。感谢药物所领导和老师给予的关怀和支持。最后,感谢养育我的父母,感谢父母多年来对我学业的支持。胡颓子叶化学成分及药理活性研究

作者:

学位授予单位:

付义成

山东省医学科学院

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3. 赵鑫.黄浩.朱瑞良.ZHAO Xin.HUANG Hao.ZHU Rui-liang 中药胡颓子叶的脂溶性化学成分研究[期刊论文]-中成药2006,28(3)

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5. 赵鑫.朱瑞良.姜标.黄浩.ZHAO Xin.ZHU Rui-liang.JIANG Biao.HUANG Hao 胡颓子有效部位化学成分研究[期刊论文]-中国中药杂志2006,31(6)

6. 赵鑫 胡颓子(胡颓子科),短肋羽藓(藓纲:羽藓科)和假柴龙树(茶茱萸科)的化学成分和生物活性[学位论文]2006

7. 娄方明.杨娟.白志川.武冰峰.LOU Fang-ming.YANG Juan.BAI Zhi-chuan.WU Bing-feng 长叶胡颓子根茎化学成分研究Ⅰ[期刊论文]-中国中药杂志2006,31(12)

8. 黄浩.赵鑫.姜标.HUANG Hao.ZHAO Xin.JIANG Biao 胡颓子科植物化学成分研究概况[期刊论文]-中草药2006,37(2)

9. 林萍.LIN Ping 胡颓子对人胃癌细胞增殖抑制的实验研究[期刊论文]-时珍国医国药2007,18(9)10. 骆文福 红果绿叶--胡颓子[期刊论文]-林业实用技术2002(3)

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